5.2. Analýza esenciálních olejů

Izolace silic hydrodestilací byla prováděna v přístroji typu Clevenger po dobu 3 h [64].

Glykosid cistanche může také zvýšit aktivitu SOD v srdeční a jaterní tkáni a významně snížit obsah lipofuscinu a MDA v každé tkáni, účinně zachycovat různé reaktivní kyslíkové radikály (OH-, H₂O₂ atd.) a chránit před způsobeným poškozením DNA. OH-radikály. Cystanche fenylethanoidové glykosidy mají silnou schopnost vychytávání volných radikálů, vyšší redukční schopnost než vitamín C, zlepšují aktivitu SOD v suspenzi spermií, snižují obsah MDA a mají určitý ochranný účinek na funkci membrány spermií. Polysacharidy Cistanche mohou zvýšit aktivitu SOD a GSH-Px v erytrocytech a plicních tkáních experimentálně senescentních myší způsobených D-galaktózou, stejně jako snížit obsah MDA a kolagenu v plicích a plazmě a zvýšit obsah elastinu. dobrý čisticí účinek na DPPH, prodlužuje dobu hypoxie u senescentních myší, zlepšuje aktivitu SOD v séru a oddaluje fyziologickou degeneraci plic u experimentálně senescentních myší Experimenty prokázaly, že Cistanche má dobrou antioxidační schopnost s buněčnou morfologickou degenerací a má potenciál být lékem k prevenci a léčbě nemocí stárnutí kůže. Zároveň má echinakosid v Cistanche významnou schopnost vychytávat volné radikály DPPH a dokáže vychytávat reaktivní formy kyslíku, bránit volnými radikály indukované degradaci kolagenu a má také dobrý opravný účinek na poškození aniontů volnými radikály thyminu.

Klikněte na doplněk Cistanche Tubulosa

【Další informace: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:{0}}】

Analýzy olejů byly prováděny jak plynovou chromatografií (GC), tak plynovou chromatografií/hmotnostní spektrometrií (GC/MS). GC analýzy byly provedeny pomocí plynového chromatografu (Agilent 7890A, Palo Alto, CA, USA), vybaveného 30 m × 0,25 mm id s 0,25 µm stacionární tloušťka filmu HP-5 kapilární kolona (Agilent J&W, Santa Clara, CA, USA). Byl použit následující teplotní program: od 60 ◦C do 246 ◦C rychlostí 3 ◦C min−1 a poté udržován na 246 ◦C po dobu 20 minut (celková doba analýzy 82 minut). Další provozní podmínky byly následující: nosný plyn helium (čistota větší nebo rovna 99,9999 procent – ​​Air Liquide, Milán, Itálie); průtok, 1,0 ml.min−1; teplota vstřikovače, 250 ◦C; teplota detektoru, 300 ◦C. Injekce 1 ul zředěného vzorku (1:100 v n-hexanu, hmotn./hmotn.) byla provedena s dělicím poměrem 1:20 za použití automatického vzorkovače (Agilent, Model 7683B, Santa Clara, CA, USA).

GC-MS analýzy byly provedeny pomocí plynového chromatografu (Agilent 6890N, Santa Clara, CA, USA) vybaveného 30 m × 0,25 mm id s 0,25 µm tloušťkou stacionárního filmu HP{ {7}}ms kapilární kolona (Agilent J&W, Santa Clara, CA, USA) spojená s hmotnostně selektivním detektorem s elektronovým ionizačním zařízením, EI, a kvadrupólovým analyzátorem (Agilent 5973, Santa Clara, CA, USA). Teplotní program a chromatografické pracovní podmínky (kromě detektoru) byly stejné jako pro GC-FID. Podmínky MS byly následující: teplota MS přenosové linky 240 °C; EI teplota iontového zdroje, 200 ◦C s ionizační energií 70 eV; kvadrupólová teplota 150 ◦C; rychlost skenování, 3,2 skenů.s−1 v rozsahu skenování m/z, (30 až 480). Ke zpracování a zpracování chromatogramů a hmotnostních spekter byl použit software MSD ChemStation (Agilent, rev. E.01.00.237, Santa Clara, CA, USA). Sloučeniny byly identifikovány porovnáním jejich hmotnostních spekter s daty knihovny NIST02 systému GC/MS a Adamsových knihoven [32,33]. Výsledky byly dále potvrzeny srovnáním s pořadím eluce sloučeniny s jejich retenčními indexy na semipolárních fázích uváděnými v literatuře [32]. Retenční indexy složek byly stanoveny ve vztahu k retenčním časům řady n-alkanů (dvě standardní směsi C8–C20 a C21–C40) s lineární interpolací [65]. Procento jednotlivých složek bylo vypočteno na základě ploch píku GC bez korekce faktoru odezvy FID. Výsledky jsou uvedeny jako procento jednotlivých píku ± standardní odchylka dvou nezávislých chromatografických běhů.

5.3. Antifungální aktivita

Antifungální aktivita silice S. cacaliifolia byla hodnocena proti vláknitým houbám a kvasinkám. Tři klinické kmeny dermatofytů izolované z nehtů a kůže (Epidermophyton floccosum FF9, Trichophyton mentagrophytes FF7 a Microsporum canis FF1) a čtyři kmeny typu dermatofytů z Colección Espanõla de Cultivos Tipo (T. mentagrophytes var. T. mentagrophytes var. 2958 Crum 2794, T. verrucosum CECT 2992 a M. gypseum CECT 2908), jeden kmen typu Cryptococcus neoformans (C. neoformans YPO186), dva klinické kmeny Candida izolované z recidivujících případů vulvovaginálních (C. krusei LF33, C. MAT guillermond) tři kmeny typu Candida (C. albicans ATCC 10231, C. tropicalis YPO128 a C. paraphimosis ATCC 90018). Všechny kmeny byly před každým testem skladovány v Sabouraud dextrózovém bujónu s 20 procenty glycerolu při -80 °C a subkultivovány na Sabouraudově dextrózovém agaru (SDA) nebo bramborovém dextrózovém agaru (PDA), aby byly zajištěny optimální podmínky růstu a čistota.

Pro stanovení minimálních inhibičních koncentrací (MIC) a minimální letální koncentrace (MLC) oleje byla použita mikrodiluční bujónová metoda podle referenčního protokolu Institutu pro klinické a laboratorní standardy (CLSI) M38-A2 [66] popř. M27-A3 [67] pro vláknité houby a kvasinky. MIC byla nejnižší koncentrace, ve které nebyl pozorován žádný růst v naočkovaných zkumavkách, zatímco MLC byla nejnižší koncentrace, kde nebyl pozorován žádný růst po inokulaci do SDA ze všech negativních zkumavek. Zahrnuty byly také negativní (neočkované médium) a pozitivní (naočkované médium s 1 procentem DMSO) kontrola.

5.4. Protizánětlivá aktivita

RAW 264.7, buněčná linie myších leukemických makrofágů získaná z American Type Culture Collection (ATCC TIB-71), byla kultivována, jak již dříve naše skupina uvedla [22].

Produkce NO byla měřena kvantifikací akumulace dusitanů v supernatantech kultury pomocí Griessova činidla [68]. Buňky (0,6 × 106 buněk/jamka) byly kultivovány v 48-jamkových kultivačních destičkách. Po stabilizaci přes noc byly makrofágy předem ošetřeny po dobu 1 hodiny esenciálním olejem (0.08–1,25 µL/ml) zředěným v DMSO a poté aktivovány 50 ng/ml LPS po dobu 24 hodin Byly provedeny pozitivní (LPS-stimulované makrofágy) a negativní kontroly (neléčené makrofágy). Po této inkubační době byly přidány stejné objemy supernatantů kultury a Griessova činidla [1:1 0,1 procenta (hmotnost/objem) N-(1-naftyl) ethylendiamin dihydrochloridu a 1 procento (hmotnost/objem) sulfanilamidu obsahujícího 5 procent ( w/v) H3P04] byly smíchány a inkubovány po dobu 30 minut ve tmě. Absorbance při 550 nm byla registrována v automatické čtečce destiček (Agilent, Santa Clara, CA, USA) a koncentrace dusitanu byla stanovena ze standardní křivky dusitanu sodného. Naše skupina již prokázala, že DMSO v maximální použité koncentraci (0,4 procenta) nemá protizánětlivé a cytotoxické účinky (data nejsou uvedena).

RAW 264.7 (1,2 × 106 buněk/jamka) byl kultivován v 6-jamkových destičkách a ponechán stabilizovat po dobu 12 hodin. Dále byly buňky inkubovány s esenciálním olejem (0,64 ul/ml) po dobu 1 hodiny a následně LPS (50 ng/ml) aktivací po dobu 24 hodin. Byla zvažována negativní kontrola (neošetřené buňky) a pozitivní kontrola (buňky ošetřené pouze LPS). Buněčné lyzáty byly připraveny tak, jak bylo dříve popsáno v Zuzarte et al. [22].

Byla provedena analýza Western blot za účelem měření hladin proteinů indukovatelné syntázy oxidu dusnatého (iNOS) a cyklooxygenázy {{0}} (COX-2). Proteiny byly separovány elektroforézou na SDS-polyakrylamidu 10 procent (v/v), při 130 V po dobu 1,5 hodiny, a přeneseny na polyvinylidenfluoridové membrány (předtím aktivované methanolem) při 400 mA po dobu 3 hodin. Po blokování nespecifických IgG 5% (w/v) mléka v TBS-T po dobu 1 hodiny při pokojové teplotě byly membrány inkubovány se specifickými protilátkami proti iNOS (1:500; R & D Systems) nebo COX{{15} } (1:5000; Abcam, Cambridge, Spojené království) přes noc při 4 ◦C. Dále byly membrány promyty po dobu 30 minut pomocí TBS-T (10 minut, 3krát) a inkubovány při teplotě místnosti po dobu 1 hodiny se sekundárními protilátkami (1:40,000; Santa Cruz Biotechnology, Dallas, TX , USA) konjugovaný s křenovou peroxidázou. Imunokomplexy byly detekovány pomocí chemiluminiscenčního skeneru (Image Quant LAS 500, GE, Boston, MA, USA). Membrány byly sondovány anti-tubulinovou protilátkou (1:20 000; Sigma), aby bylo zaručeno, že bylo naneseno ekvivalentní množství proteinu. Kvantifikace proteinu byla provedena pomocí ImageLab verze 6.1.0 (Bio-Rad Laboratories Inc., Hercules, CA, USA).

5.5. Buněčná migrace

NIH 3T3, buněčná linie myších embryonálních fibroblastů (ATCC CRL-1658), byla kultivována, jak bylo dříve popsáno v naší skupině [69].

5.5.2. Test buněčné migrace

Buněčná migrace byla provedena pomocí testu na škrábnutí, jak uvádí Martinotti a kolegové [70] s mírnými úpravami. Stručně, NIH 3T3 fibroblasty byly nasazeny v množství 2,5 x 105 buněk/ml na 12-jamkové destičky. Po 24 hodinách růstu bylo provedeno škrábání v buněčné monovrstvě pomocí špičky 20–200 µl pipety. Oddělené buňky byly odstraněny promytím buněk sterilním PBS 1x. DMEM s 2 procenty séra bylo přidáno na všechny destičky, v přítomnosti nebo nepřítomnosti esenciálního oleje. Pomocí mikroskopu s fázovou kontrakcí byly snímky pořízeny 0, 12 a 18 hodin po poškrábání a oblast rány byla měřena pomocí softwaru ImageJ/Fiji. Prezentované výsledky byly získány pomocí následující rovnice

5.6. Životaschopnost buněk

Vliv různých koncentrací silice na životaschopnost jak makrofágů, tak fibroblastů byl proveden pomocí testu redukce resazurinu. Stručně, makrofágy ({{0}},6 x 106 buněk/ml) nebo fibroblasty (1,25 x 105 buněk/ml) byly nasazeny do 48-jamkových destiček. Po stabilizaci přes noc byly na 24 hodin přidány různé koncentrace silice (0,08–1,25 µL/ml) zředěné v DMSO. Na konci experimentu bylo médium odstraněno a bylo přidáno čerstvé médium obsahující resazurin (1:10) na 1 hodinu nebo 4 hodiny pro makrofágy a fibroblasty, v daném pořadí. Absorbance při 570 nm s referenčním filtrem 620 nm byla registrována v automatické čtečce destiček (Agilent, Santa Clara, CA, USA). Životaschopnost buněk byla stanovena pomocí následující rovnice:

kde AbsExp je absorbance (rozdíl mezi 570 a 620 nm) v různých experimentálních podmínkách a AbsCT je absorbance v kontrolních buňkách (bez esenciálního oleje).

5.7. Senescence indukovaná etoposidy 

Senescence byla hodnocena pomocí komerčně dostupné soupravy pro barvení beta-galaktosidázou podle protokolu výrobce (Cell Signaling Technology). Stručně, 2,5 x 104 fibroblastů bylo nasazeno do 12-jamkových destiček a ponecháno přes noc přilnout. Dále byla indukována senescence inkubací buněk s 12,5 uM etoposidu po dobu 24 hodin. Etoposid byl odstraněn a buňky byly 1x promyty PBS. Dále byly buňky ponechány zotavit se po dobu 72 hodin v DMEM v nepřítomnosti nebo přítomnosti esenciálního oleje S. cacaliifolia a změny v morfologii byly hodnoceny denně. Po 72 hodinách byly buňky fixovány po dobu 15 minut pomocí 1x fixačního roztoku (dodávaného v komerční sadě), následovalo promytí PBS a inkubovány přes noc s roztokem pro barvení beta-galaktosidázou v suchém inkubátoru při 37 °C bez přívodu CO2. Různá pole byla pozorována pod mikroskopem pro vývoj modré barvy a byla fotografována pro analýzu obrazu (8 snímků za podmínek). Zřetelné modré zbarvení svědčilo o aktivitě beta-galaktosidázy. Kvantitativní analýza byla provedena pomocí ImageJ a bylo vypočteno procento senescentních buněk k celkovému počtu buněk.

5.8. Statistická analýza

Výsledky jsou prezentovány jako průměrné hodnoty ± SEM (směrodatná chyba průměru) z alespoň tří nezávislých experimentů provedených v duplikátech. Statistická významnost pro protizánětlivé testy, testy viability buněk a stárnutí byly stanoveny pomocí jednocestné analýzy rozptylu (ANOVA) následované Dunnettovým post-hoc testem pomocí GraphPad Prism verze 9.3.0 (GraphPad Software, San Diego, CA, USA). Pro testy buněčné migrace byla stanovena statistická významnost pomocí dvoucestné ANOVA následované Sydákovým vícenásobným srovnávacím testem. P-hodnota < 0,05 byla považována za významné rozdíly.

Příspěvky autora:Konceptualizace, LS a AM; validace, AS, MJG, MTC a SP; formální analýza, JMA-S., MJG, AP a DF; vyšetřování, JMA-S., AM a AP; zdroje, AM, EC, MTC a LS; správa dat, AP; psaní – příprava původního návrhu, JMA-S., AP a AM; psaní – recenze a úpravy, MTC, LS a AM; vizualizace, JMA-S.; supervize, LS a AM; administrace projektů, LS; získávání finančních prostředků, LS a MTC Všichni autoři si přečetli publikovanou verzi rukopisu a souhlasili s ní.

Financování:Tato práce byla financována z COMPETE 2020—Operační program pro konkurenceschopnost a internacionalizaci a portugalskými národními fondy prostřednictvím FCT—Fundação para a Ciência ea Tecnologia, v rámci projektů UIDB/04539/2020, UIDP/04539/2020 a LA.58/P/000

Prohlášení o dostupnosti dat:Údaje budou k dispozici na vyžádání.

Střet zájmů:Autoři neprohlašují žádný střet zájmů.

Reference

1. Bongomin, F.; Gago, S.; Oladele, R.; Denning, D. Globální a multi-národní prevalence plísňových onemocnění – přesnost odhadu. J. Fungi 2017, 3, 57. [CrossRef] [PubMed]

2. Campoy, S.; Adrio, JL Antimykotika. Biochem. Pharm. 2017, 133, 86–96. [CrossRef] [PubMed]

3. Gupta, AK; Cooper, EA Aktualizace v antifungální terapii dermatofytózy. Mycopathologia 2008, 166, 353–367. [CrossRef]

4. Matiz, C.; Friedlander, SF Infekce podkožní tkáně a abscesy. In Principy a praxe dětských infekčních nemocí; Elsevier: Amsterdam, Nizozemsko, 2012; s. 454–462.e3.

5. de Oliveira, CB; Vasconcellos, C.; Sakai-Valente, NY; Sotto, MN; Luiz, FG; Belda Júnior, W.; de Sousa, MdGT; Benard, G.; Criado, PR Toll-like receptory (TLR) 2 a 4 Exprese keratinocytů od pacientů s lokalizovanou a diseminovanou dermatofytózou. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo 2015, 57, 57–61. [CrossRef] [PubMed]

6. Celestrino, GA; Reis, APC; Criado, PR; Benard, G.; Sousa, MGT Trichophyton Rubrum vyvolává fagocytární a prozánětlivé reakce v lidských monocytech prostřednictvím Toll-like receptoru 2. Přední strana. Microbiol. 2019, 10, 2589. [CrossRef]

7. Sun, S.-C. Nekanonická cesta NF-B v imunitě a zánětu. Nat. Rev. Immunol. 2017, 17, 545–558. [CrossRef] [PubMed]

8. Sharma, A.; Gupta, S. Ochranný projev herbonanoceutik jako antimykotik: Možný lékový kandidát pro dermatofytickou infekci. Health Sci. Rep. 2022, 5. [CrossRef]

9. Guo, S.; DiPietro, LA Faktory ovlivňující hojení ran. J. Dent. Res. 2010, 89, 219–229. [CrossRef]

10. Zuzarte, M.; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Canhoto, J.; Vale-Silva, L.; Silva, MJ; Pinto, E.; Salgueiro, L. Chemické složení a antifungální aktivita esenciálních olejů Lavandula Viridis LHér. J. Med. Microbiol. 2011, 60, 612–618. [CrossRef]

11. Martinez-Rossi, NM; Bitencourt, TA; Peres, NTA; Lang, EAS; Gomes, EV; Quaresemin, NR; Martins, poslanec; Lopes, L.; Rossi, A. Odolnost dermatofytů k antifungálním lékům: Mechanismy a prospekt. Přední. Microbiol. 2018, 9, 1108. [CrossRef]

12. Mourad, A.; Perfect, JR The War on Cryptococosis: A Review of Antifungal Arsenal. Mem. Inst. Oswaldo. Cruz. 2018, 113, e170391. [CrossRef] [PubMed]

13. McCarthy, MW; Kontoyiannis, DP; Cornely, OA; Perfektní, JR; Walsh, TJ noví agenti a drogové cíle, jak čelit výzvám odolných hub. J. Infect. Dis. 2017, 216, S474–S483. [CrossRef] [PubMed]

14. Vonkeman, ON; van de Laar, MAFJ Nesteroidní protizánětlivé léky: Nežádoucí účinky a jejich prevence. Semin. Artritida. Rheum. 2010, 39, 294–312. [CrossRef] [PubMed]

15. Bakkali, F.; Averbeck, S.; Averbeck, D.; Idaomar, M. Biologické účinky esenciálních olejů Přehled. Food Chem. Toxicol. 2008, 46, 446–475. [CrossRef] [PubMed]

16. Christaki, E.; Bonos, E.; Giannenas, I.; Florou-Paneri, P. Aromatické rostliny jako zdroj bioaktivních sloučenin. Zemědělství 2012, 2, 228–243. [CrossRef]

17. Edris, AE Farmaceutický a terapeutický potenciál esenciálních olejů a jejich těkavých složek: Přehled. Phytother. Res. 2007, 21, 308–323. [CrossRef] [PubMed]

18. Pinto, E.; Vale-Silva, L.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. Antifungální aktivita hřebíčkového esenciálního oleje z Syzygium Aromaticum na Candida, Aspergillus a dermatofyt. J. Med. Microbiol. 2009, 58, 1454–1462. [CrossRef]

19. Pinto, E.; Hrimpeng, K.; Lopes, G.; Vaz, S.; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L. Antifungální aktivita esenciálního oleje Ferulago Capillaris proti Candida, Cryptococcus, Aspergillus a Dermatophyte Species. Eur. J. Clin. Microbiol. Infikovat. Dis. 2013, 32, 1311–1320. [CrossRef]

20. Pinto, E.; Pina-Vaz, C.; Salgueiro, L.; Gonçalves, MJ; Costa-de-Oliveira, S.; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Ro-drigues, A.; Martinezde-Oliveira, J. Antifungální aktivita esenciálního oleje Thymus Pulegioides na druhy Can-dida, Aspergillus a Dermatophyte. J. Med. Microbiol. 2006, 55, 1367–1373. [CrossRef]

21. Valente, J.; Zuzarte, M.; Gonçalves, MJ; Lopes, MC; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Antifungální, antioxidační a protizánětlivé aktivity Oenanthe Crocata L. Esenciální olej. Food Chem. Toxicol. 2013, 62, 349–354. [CrossRef] [PubMed]

22. Zuzarte, M.; Alves-Silva, JM; Alves, M.; Cavaleiro, C.; Salgueiro, L.; Cruz, MT Nové poznatky o protizánětlivém potenciálu a bezpečnostním profilu esenciálních olejů Thymus Carnosus a Thymus Camphoratus a jejich hlavních sloučenin. J. Ethnopharmacol. 2018, 225, 10–17. [CrossRef]

23. Walker, JB; Sytsma, KJ; Treutlein, J.; Wink, M. Salvia (Lamiaceae) není monofyletická: Důsledky pro systematiku, radiaci a ekologické specializace šalvěje a kmene Mentheae. Dopoledne. J. Bot. 2004, 91, 1115–1125. [CrossRef] [PubMed]

24. Su, C.-Y.; Ming, Q.-L.; Rahman, K.; Han, T.; Qin, L.-P. Salvia Miltiorrhiza: Tradiční použití v lékařství, chemie a farmakologie. Brada. J. Nat. Med. 2015, 13, 163–182. [CrossRef] [PubMed]

25. Ghorbani, A.; Esmaeilizadeh, M. Farmakologické vlastnosti Salvia Officinalis a jejích složek. J. Tradit. Doplněk. Med. 2017, 7, 433–440. [CrossRef]

26. Afonso, AF; Alves-Silva, JM; Pereira, OR; Cardoso, SM Příznivé účinky rostlin šalvěje: Korelace s bioaktivními složkami. In Recent Progress in Medicinal Plants Volume 44: Phytotherapeutics III; Govil, JN, Pathak, M., Eds.; Studium Press: New Delhi, Indie, 2016; s. 161–198.

27. Salimikia, I.; Aryanpour, M.; Abdollahi, M.; Abdolghaffari, A.; Samadi, N.; Monsef-Esfahani, H. Fytochemické účinky a účinky na hojení ran metanolového extraktu ze Salvia Multicaulis Vahl. v Rat. Planta Med. 2016, 81, S1–S381. [CrossRef]

28. Gali-Muhtasib, H.; Hilan, C.; Khater, C. Tradiční použití Salvia Libanotica (šalvěj východního Středomoří) a účinky jejích esenciálních olejů. J. Ethnopharmacol. 2000, 71, 513–520. [CrossRef] [PubMed]

29. Hamidpour, M.; Hamidpour, R.; Hamidpour, S.; Shahlari, M. Chemie, farmakologie a léčivé vlastnosti šalvěje (Salvia) k prevenci a léčbě nemocí, jako je obezita, diabetes, deprese, demence, lupus, autismus, srdeční choroby a rakovina. J. Tradit. Doplněk. Med. 2014, 4, 82–88. [CrossRef]

30. Askari, SF; Avan, R.; Tayarani-Najaran, Z.; Sahebkar, A.; Eghbali, S. Iranian Salvia Species: A Phytochemical and Pharmacological Update. Fytochemie 2021, 183, 112619. [CrossRef]

31. Davidse, G.; Sousa Sánchez, M.; Knapp, SD; Chian Cabrera, F. Rubiaceae a Verbenaceae. 4(2): I–Xvi, 1–533. In Flora Mesoamericana; Davidse, G., Sousa Sánchez, M., Knapp, SD, Chian Cabrera, F., Eds.; Missouri Botanical Garden: St. Louis, MO, USA, 2012; s. 402–403.

32. Adams, RP Identifikace složek esenciálního oleje pomocí plynové chromatografie/kvadrupólové hmotnostní spektroskopie, 4. vydání; Allured Publishing Corporation: Carol Stream, IL, USA, 2007.

33. NIST/EPA/NIH Mass Spectral Library 2005.

34. Guijarro-Muñoz, I.; Compte, M.; Álvarez-Cienfuegos, A.; Álvarez-Vallina, L.; Sanz, L. Lipopolysaccharide Activates Toll-like Receptor 4 (TLR4)-mediated NF-KB Signaling pathway and proinflamatory response in Human Pericytes. J. Biol. Chem. 2014, 289, 2457–2468. [CrossRef]

35. Scrima, M.; Melito, C.; Merola, F.; Iorio, A.; Vito, N.; Giori, AM; Ferravante, A. Hodnocení aktivity hojení ran šalvěje Haenkei z hydroalkoholové vzdušné části extraktu na experimentálních modelech in vitro a in vivo. Clin. Kosmetika. Vyšetřování. Derm. 2020, 13, 627–637. [CrossRef] [PubMed]

36. Farahpour, MR; Pirkhezr, E.; Ashrafian, A.; Sonboli, A. Urychlené hojení lokálním podáváním esenciálního oleje Salvia Officinalis na modelu rány infikované Pseudomonas aeruginosa a Staphylococcus Aureus. Biomed. Pharmacother. 2020, 128, 110120. [CrossRef]

37. Matic, I.; Revandkar, A.; Chen, J.; Bisio, A.; Dall'Acqua, S.; Cocetta, V.; Brun, P.; Mancino, G.; Milanese, M.; Mattei, M.; a kol. Identifikace Salvia Haenkei jako gerosupresivního činidla pomocí integrovaného testu Senes-science-screening. Stárnutí 2016, 8, 3223–3240. [CrossRef]

38. Park, CH; Shin, SH; Lee, EK; Kim, DH; Kim, M.-J.; Roh, S.-S.; Yokozawa, T.; Chung, HY Lithospermát hořečnatý B od Salvia Miltiorrhiza BUNGE zmírňuje stárnutím vyvolaný zánět ledvin a stárnutí prostřednictvím tvorby reaktivního kyslíku zprostředkovaného oxidázou NADPH. Phytother. Res. 2017, 31, 721–728. [CrossRef]

39. Najar, B.; Mecacci, G.; Nardi, V.; Cervelli, C.; Nardoni, S.; Mancianti, F.; Ebani, VV; Giannecchini, S.; Pistelli, L. Těkavé látky a antifungální-antibakteriální-antivirová aktivita jihoafrické Salvia Spp. Esenciální oleje pěstované v jednotných podmínkách. Molekuly 2021, 26, 2826. [CrossRef] [PubMed]

40. Abu-Darwish, MS; Cabral, C.; Ali, Z.; Wang, M.; Khan, SI; Jacob, MR; Jain, SK; Tekwani, BL; Zulfiqar, F.; Khan, IA; a kol. Salvia Ceratophylla L. z jihu Jordánska: Nové poznatky o chemickém složení a biologických aktivitách. Nat. Prod. Bioprospect. 2020, 10, 307–316. [CrossRef] [PubMed]

41. Taarit, MB; Msaada, K.; Hosní, K.; Chahed, T.; Marzouk, B. Složení esenciálního oleje ze šalvěje verbenaca rostoucí divoce v Tunisku. J. Food Biochem. 2010, 34, 142–151. [CrossRef]

42. Viljoen, AM; Gono-Bwalya, A.; Kamatou, GPP; Bašer, KHC; Demirci, B. Složení esenciálního oleje a chemotaxonomie Salvia Stenophylla a jejích spojenců S. Repens a S. Runcinata. J. Essent. Oil Res. 2006, 18, 37–45. [CrossRef]

43. Pinto, E.; Salgueiro, LR; Cavaleiro, C.; Palmeira, A.; Gonçalves, MJ In vitro Citlivost některých druhů kvasinek a vláknitých hub na esenciální oleje Salvia Officinalis. Ind. Crop. Prod. 2007, 26, 135–141. [CrossRef]

44. Tosun, A.; Khan, S.; Kim, Y.; Calín-Sánchez, A.; Hysenaj, X.; Carbonell-Barrachina, A. Složení esenciálního oleje a protizánětlivá aktivita Salvia Officinalis L (Lamiaceae) v makrofázích Murin. Trop. J. Pharm. Res. 2014, 13, 937. [CrossRef]

45. Abu-Darwish, MS; Cabral, C.; Ferreira, IV; Gonçalves, MJ; Cavaleiro, C.; Cruz, MT; Al-bdour, TH; Sal-gueiro, L. Esenciální olej ze šalvěje lékařské (Salvia Officinalis L.) z Jordánska: Hodnocení bezpečnosti v buňkách savců a jeho antifungální a protizánětlivý potenciál. Biomed. Res. Int. 2013, 2013, 1.–9. [CrossRef]

46. ​​Leporini, M.; Bonesi, M.; Loizzo, MR; Passalacqua, NG; Tundis, R. Esenciální olej šalvěje Rosmarinus Spenn. z Itálie jako zdroj zdraví prospěšných sloučenin: Chemický profil a antioxidační a cholinesterázová inhibiční aktivita. Rostliny 2020, 9, 798. [CrossRef]

47. Choi, JK; Oh, H.-M.; Lee, S.; Kwon, TK; Shin, T.-Y.; Rho, M.-C.; Kim, S.-H. Salvia Plebeia potlačuje kožní léze podobné atopické dermatitidě. Dopoledne. J. Chin. Med. 2014, 42, 967–985. [CrossRef]

48. Fahed, L.; Stien, D.; Ouaini, N.; Eparvier, V.; el Beyrouthy, M. Chemická diverzita a antimikrobiální aktivita esenciálních olejů Salvia multicaulis Vahl. Chem. Biodivers. 2016, 13, 591–595. [CrossRef]

49. Juliano, C.; Marchetti, M.; Campagna, P.; Usai, M. Antimikrobiální aktivita a chemické složení esenciálního oleje z Helichrysum Microphyllum Cambess. Subsp. Tyrrhenicum Bacch., Brullo & Giusso shromážděny v jihozápadní Sardinii. Saudská Arábie. J. Biol. Sci. 2019, 26, 897–905. [CrossRef] [PubMed]

50. On, X.; Zhang, L.; Chen, J.; Sui, J.; Yi, G.; Wu, J.; Ma, Y. Korelace mezi chemickým složením a antifungální aktivitou Clausena Lansium Essential Oil proti Candida spp. Molekuly 2019, 24, 1394. [CrossRef]

51. Ruiz-Vásquez, L.; Ruiz Mesia, L.; Caballero Ceferino, HD; Ruiz Mesia, W.; Andrés, MF; Díaz, CE; Gonza-lez-Coloma, A. Antifungální a herbicidní potenciál esenciálních olejů Piper z peruánské Amazonie. Plants 2022, 11, 1793. [CrossRef] [PubMed]

52. Fontenelle, ROS; Morais, SM; Brito, EHS; Brilhante, RSN; Cordeiro, RA; Nascimento, NRF; Kerntopf, MR; Sidrim, JJC; Rocha, MFG Antifungální aktivita esenciálních olejů krotonských druhů z brazilského biomu Caatinga. J. Appl. Microbiol. 2008, 104, 1383–1390. [CrossRef] [PubMed]

53. Mathela, C.; Joshi, S. Antioxidační a antibakteriální aktivity listového esenciálního oleje a jeho složek Furanodienone a Curzerenone od Lindera Pulcherrima (Nees.) Benth. Ex Hook. F. Farmakognosie. Res. 2012, 4, 80. [CrossRef]

54. Serra, E.; Hidalgo-Bastida, L.; Verran, J.; Williams, D.; Malic, S. Antifungální aktivita komerčních esenciálních olejů a biocidů proti Candida Albicans. Patogeny 2018, 7, 15. [CrossRef]

55. Burstein, VL; Beccacece, I.; Guasconi, L.; Mena, CJ; Cervi, L.; Chiapello, LS Imunita kůže vůči dermatofytům: Od experimentálních infekčních modelů k lidským nemocem. Přední. Immunol. 2020, 11, 605644. [CrossRef]

56. Genci´c, MS; Aksi´c, JM; Živkovi´c Stoši´c, MZ; Randjelovič, PJ; Stojanovi´c, NM; Stojanovi´c-Radi´c, ZZ; Radulovi´c, NS Spojení antimikrobiálních a protizánětlivých účinků slaměnkového esenciálního oleje s jeho chemickým složením – souhra mezi hlavními a vedlejšími složkami. Food Chem. Toxicol. 2021, 158, 112666. [CrossRef] [PubMed]

57. A´cimovič, M.; Ljuji´c, J.; Vulič, J.; Željazkov, VD; Pezo, L.; Varga, A.; Tumbas Šaponjac, V. Helichrysum Ital-icum (Roth) G. Donský esenciální olej ze Srbska: Chemické složení, klasifikace a biologická aktivita – může být vhodnou novou plodinou pro Srbsko? Agronomie 2021, 11, 1282. [CrossRef]

58. Amorim, JL; Simas, DLR; Pinheiro, MMG; Moreno, DSA; Alviano, CS; da Silva, AJR; Dias Fernandes, P. Protizánětlivé vlastnosti a chemická charakterizace esenciálních olejů čtyř druhů citrusů. PLoS ONE 2016, 11, e0153643. [CrossRef]

59. Ascari, J.; de Oliveira, MS; Nunes, DS; Granato, D.; Scharf, DR; Simionatto, E.; Otuki, M.; Soley, B.; Heiden, G. Chemické složení, antioxidační a protizánětlivé aktivity esenciálních olejů z mužských a ženských vzorků Baccharis punctulata (Asteraceae). J. Ethnopharmacol. 2019, 234, 1–7. [CrossRef]

60. Singh, P.; Singh, S.; Kapoor, IPS; Singh, G.; Isidorov, V.; Szczepaniak, L. Chemické složení a antioxidační aktivity esenciálního oleje a oleoresinů z oddenků Curcuma Zedoaria, část-74. Food Biosci. 2013, 3, 42–48. [CrossRef]

61. Jena, S.; Ray, A.; Banerjee, A.; Sahoo, A.; Nasim, N.; Sahoo, S.; Kar, B.; Patnaik, J.; Panda, PC; Nayak, S. Chemické složení a antioxidační aktivita esenciálního oleje z listů a oddenků Curcuma Angustifolia Roxb. Nat. Prod. Res. 2017, 31, 2188–2191. [CrossRef]

62. Andji´c, M.; Božin, B.; Dragini´c, N.; Kocovič, A.; Jeremi´c, JN; Tomovič, M.; Milojevi´c Šamanovi´c, A.; Kladar, N.; ˇCapo, I.; Jakovljevič, V.; a kol. Formulace a hodnocení topických přípravků na bázi esenciálního oleje Helichrysum Italicum pro hojení ran u diabetických potkanů. Pharmaceuticals 2021, 14, 813. [CrossRef]

63. Ahlina, FN; Nugraheni, N.; Salsabila, IA; Haryanti, S.; Da'i, M.; Meiyanto, E. Odhalení reverzního účinku extraktu galangalu (Alpinia Galanga L.) proti oxidačnímu stresu v buňkách metastatického karcinomu prsu a normálních fibroblastových buňkách zamýšlených jako ko-chemoterapeutikum a činidlo proti stárnutí. Asijský Pac. J. Cancer Předchozí. 2020, 21, 107–117. [CrossRef]

64. Rada Evropy. European Pharmacopoeia, 7. vydání; Ředitelství pro kvalitu léčiv a zdravotní péče Rady Evropy: Štrasburk, Francie, 2010; ISBN 978-92-871-6700-2.

65. van den Dool, H.; Kratz, PD Zobecnění systému retenčního indexu včetně lineární teplotně programované plynové – kapalinové rozdělovací chromatografie. J. Chromatogr. 1963, 11, 463–471. [CrossRef]

66. Ústav klinických a laboratorních standardů. Referenční metoda pro testování antifungální citlivosti vláknitých hub na ředění bujónu; Schválený standard M38-A2, 2. vydání; Institut pro klinické a laboratorní standardy: Wayne, PA, USA, 2008; ISBN 1-56238-668-9.

67. Ústav klinických a laboratorních standardů. Referenční metoda pro ředění bujónu Antifungální testování citlivosti kvasinek; Schválený standard M27-A3, 3. vydání; Institut pro klinické a laboratorní standardy: Wayne, PA, USA, 2008; ISBN 1-56238-666-2.

68. Green, LC; Wagner, DA; Glogowski, J.; Kapitán, PL; Wishnok, JS; Tannenbaum, SR Analýza dusičnanů, dusitanů a [15N]dusičnanů v biologických tekutinách. Anální. Biochem. 1982, 126, 131–138. [CrossRef]

69. Piras, A.; Maccioni, A.; Falconieri, D.; Porcedda, S.; Gonçalves, MJ; Alves-Silva, JM; Silva, A.; Cruz, MT; Salgueiro, L.; Maxia, A. Chemické složení a biologická aktivita esenciálního oleje Teucrium Scordium L. Subsp. Scordioides (Schreb.) Arcang. (Lamiaceae) z ostrova Sardinie (Itálie). Nat. Prod. Res. 2021, 36, 5828–5835. [CrossRef] [PubMed]

70. Martinotti, S.; Ranzato, E. Test hojení ran po poškrábání. In Epidermal Cells: Methods in Molecular Biology; Turksen, K., Ed.; Humana: New York, NY, USA, 2019; Ročník 2109, s. 225–229.

Zřeknutí se odpovědnosti / Poznámka vydavatele:Prohlášení, názory a údaje obsažené ve všech publikacích jsou výhradně výroky jednotlivých autorů a přispěvatelů, nikoli MDPI a/nebo editorů. MDPI a/nebo redaktoři se zříkají odpovědnosti za jakékoli zranění osob nebo majetku vyplývající z jakýchkoli nápadů, metod, pokynů nebo produktů uvedených v obsahu.