8. Závěry

Molekuly přírodního původu se tradičně používají v produktech na ochranu pokožky (tabulka 1, inventář CosIng). V důsledku toho se přírodní sloučeniny izolované a/nebo vyrobené pomocí biotechnologických nástrojů z mikroorganismů již používají pro dermatologické účely v topických kosmetických přípravcích. Tyto produkty mohou esteticky zlepšit vzhled pokožky, ale mohou také předcházet a/nebo léčit kožní onemocnění související s věkem. Kromě "zavedených" molekul existuje několik malých molekul a/nebo enzymů odvozených z mikroorganismů, které mají velký potenciál pro použití v kosmetice nebo kosmetických přípravcích (tabulka 1).

Podle relevantních studií je cistanche běžnou bylinou, která je známá jako „zázračná bylina, která prodlužuje život“. Jeho hlavní složkou jecistanosid, která má různé účinky jako napřantioxidant, protizánětlivé, apodpora imunitních funkcí. Mechanismus mezi cistanche akůžeběleníspočívá v antioxidačním účinku cistancheglykosidy. Melanin v lidské kůži je produkován oxidací tyrosinu katalyzovanoutyrosinázaa oxidační reakce vyžaduje účast kyslíku, takže se volné radikály v těle stávají důležitým faktorem ovlivňujícím produkci melaninu. Cistanche obsahuje cistanosid, což je antioxidant a může tak snížit tvorbu volných radikálů v tělebrzdícímelaninVýroba.

Klikněte na Cistanche Powder Bulk

Další informace:

david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501

Je zajímavé, že několik biomolekul, které jsou již zahrnuty do Evropského seznamu přijatých kosmetických přísad (CosIng inventar) [14], je registrováno pro jednu ze svých biologických aktivit, ale v kosmetických aplikacích se používají odlišně. Charakteristickým příkladem je kyselina kojová, která je registrována jako „antioxidant“, přičemž hlavním uplatněním v kosmetice je její silná anti-tyrosinázová aktivita, a tedy její aplikace jako činidla pro bělení pokožky (tabulka 1).

Vzhledem k nesmírné mikrobiální biodiverzitě a mikrobiální adaptaci na prakticky jakékoli prostředí na Zemi lze očekávat, že mikrobi představují mimořádný inventář vysoce různorodých strukturních lešení biomolekul s potenciálními ochrannými aktivitami pokožky. Ačkoli výzkum mořského prostředí začal odpovídat později než pozemského prostředí, máme několik případů, kdy kosmetické aplikace a patenty podporují mikroorganismy pocházející z moře. Jak bylo zmíněno v případě MAA známých pro svou fotoochrannou aktivitu, jsou zahrnuty v několika patentech na přírodní UV filtry. Většina z nich však byla vyvinuta s mikroorganismy z mořského prostředí (72,2 procenta), zatímco patenty vyvinuté na suchozemských a sladkovodních mikroorganismech nepřesáhly 21,4 procenta a 2,4 procenta [135]. Tato studie odráží, že dosud bylo v některých případech pozemské prostředí opomíjeno.

Střet zájmů:Autoři neprohlašují žádný střet zájmů.

Zkratky

UVB ultrafialové B

Reference

1. Ma, T.; Deng, Z.; Liu, T. Strategie mikrobiální produkce a aplikace lykopenu a dalších terpenoidů. World J. Microbiol. Biotechnol. 2016. [CrossRef] [PubMed]

2. Corinaldesi, C.; Barone, G.; Marcellini, F.; Dell'Anno, A.; Danovaro, R. Molekuly odvozené z mořských mikrobů a jejich potenciální použití v kosmeceutických a kosmetických produktech. Mar. Drugs 2017, 15, 118. [CrossRef]

3. Lobanovská, M.; Pilla, G. Objev penicilinu a rezistence na antibiotika: poučení pro budoucnost? J. Biol. Med. 2017, 90, 135–145.

4. Raja, A.; Prabakarana, P. Actinomycetes, and Drug-An Overview. Dopoledne. J. Drug Discov. Dev. 2011, 1, 75–84. [CrossRef]

5. Berdy, J. Bioaktivní mikrobiální metabolity. J. Antibiot. 2005, 58, 1–26. [PubMed]

6. Ferreira, A.; Vecino, X.; Ferreira, D.; Cruz, JM; Moldes, AB; Rodrigues, LR Nové kosmetické přípravky obsahující biosurfaktant z Lactobacillus paracasei. Koloidy Surf. B Biointerfaces 2017, 155, 522–529. [CrossRef] [PubMed]

7. Argyropoulou, A.; Aligiannis, N.; Trougakos, IP; Skaltsounis, AL Přírodní sloučeniny s anti-aging aktivitou. Nat. Prod. Rep. 2013, 30, 1412–1437. [CrossRef]

8. Cavinato, M.; Jansen-Durr, P. Molekulární mechanismy stárnutí dermálních fibroblastů indukované UVB zářením a jeho význam pro fotostárnutí lidské kůže. Exp. Gerontol. 2017, 94, 78–82.

9. Velarde, MC; Demaria, M. Cílení na senescentní buňky: Možné důsledky pro oddálení stárnutí pleti: Minirecenze. Gerontologie 2016, 62, 513–518.

10. Trougakos, IP; Šesti, F.; Tsakiri, E.; Gorgoulis, VG Neenzymatické posttranslační modifikace proteinů a deregulace proteostázové sítě v karcinogenezi. J. Proteomics 2013, 92, 274–298.

11. Sklirou, A.; Papanagnou, ED; Fokialakis, N.; Trougakos, IP chemoprevence rakoviny prostřednictvím aktivace proteostatických modulů. Cancer Lett. 2018, 413, 110–121. [CrossRef] [PubMed]

12. Zprávy o průzkumu trhu. (vstupeno 22. srpna 2017).

13. Hyde, KD; Bahkali, AH; Muslim, MA Houby – neobvyklý zdroj pro kosmetiku. Potápěči plísní. 2010, 43, 1–9. [CrossRef]

14. CosIng Inventory. Dostupné online: http://ec.europa.eu/growth/sectors/cosmetics/cosing_en (vstup 22. března 2018).

15. Chai, TT; právo, YC; Wong, FC; Kim, SK Enzymem podporovaný objev antioxidačních peptidů z jedlých mořských bezobratlých: Přehled. Drogy 2017, 15., 42. [CrossRef] [PubMed]

16. Kauppila, TES; Kauppila, JHK; Larsson, NG Savčí mitochondrie a stárnutí: aktualizace. Buňka. Metab. 2017, 25, 57–71. [CrossRef]

17. Kusumawati, I.; Indrayanto, G. Přírodní antioxidanty v kosmetice. Stud. Nat. Prod. Chem. 2013, 40, 485–505.

18. Abramovič, H.; Grobin, B.; Ulrich, NP; Cigi´c, B. Význam a standardizace antioxidačních testů in vitro: ABTS, DPPH a Folin–Ciocalteu. J. Chem. 2018, 2018, 1.–9. [CrossRef]

19. Huang, WY; Cai, YZ; Xing, J. Potenciální zdroj antioxidantů: endofytické houby z léčivých rostlin. Ekon. Bot. 2007, 61, 14–30. [CrossRef]

20. Danagoudar, A.; Joshi, CG; Kumar, RS; Poyya, J.; Nivya, T.; Hulikere, MM; Appaiah, KAA Molekulární profilování a antioxidant, stejně jako antibakteriální potenciál endofytické houby produkující polyfenol – Aspergillus austroafricanus CGJ-B3. Mykologie 2017, 8, 28–38. [CrossRef]

21. Colla, LM; Furlong, EB; Costa, JAV Antioxidační vlastnosti Spirulina (Arthospira) platensis kultivované za různých teplot a režimů dusíku. Braz. Oblouk. Biol. Technol. 2007, 50, 161–167. [CrossRef]

22. Miranda, MS; Sato, S.; Mancini-Filho, J. Antioxidační aktivita mikrořasy Chlorella vulgaris kultivované za speciálních podmínek. Boll. Chim. Farma. 2001, 140, 165–168.

23. Shalaby, ES; Shanab, SMM Antiradikálové a antioxidační aktivity různých extraktů Spirulina platensis proti DPPH a ABTS radikálovým testům. Indian J. Geomarine Sci. 2013, 42, 556–564. [CrossRef]

24. Goiris, K.; Muylaert, K.; Voorspoels, S.; Noten, B.; De Paepe, D.; GJ, B.; De Cooman, L. Detekce flavonoidů v mikrořasách z různých evolučních linií. J. Physiol. 2014, 50, 483–492. [CrossRef]

25. Jerez-Martel, I.; García-Poza, S.; Rodríguez-Martel, G.; Rico, M.; Afonso-Olivares, C.; Gómez-Pinchetti, JL Fenolický profil a antioxidační aktivita surových extraktů z kmenů mikrořas a sinic. J. Food Qual. 2017, 4, 1–8. [CrossRef]

26. Singh, DP; Prabha, R.; Verma, S.; Meena, KK; Yandigeri, M. Antioxidační vlastnosti a obsah polyfenolů v suchozemských sinicích. 3 Biotech. 2017. [CrossRef]

27. Liu, Y.; Nan, L.; Liu, J.; Yan, H.; Zhang, D.; Han, X. Izolace a identifikace endofytů produkujících resveratrol z vinné révy Cabernet Sauvignon. SpringerPlus 2016. [CrossRef] [PubMed]

28. Shi, J.; Zeng, Q.; Liu, Y.; Pan, Z. Alternaria sp. MG1, houba produkující resveratrol: izolace, identifikace a optimální kultivační podmínky pro produkci resveratrolu. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2012, 95, 369–379. [CrossRef] [PubMed]

29. Baxter, RA Vlastnosti resveratrolu proti stárnutí: přehled a zpráva o nové účinné antioxidační formulaci péče o pleť. J. Cosmet. Dermatol. 2008, 7, 2–7. [CrossRef] [PubMed]

30. Zhang, J.; Shi, J.; Liu, Y. Biokonverze resveratrolu pomocí klidových buněk geneticky nemodifikovaných Alternaria sp. Biotechnol. Appl. Biochem. 2013, 60, 236–243. [CrossRef]

31. An, SM; Koh, JS; Boo, kyselina YC P-kumarová nejen inhibuje aktivitu lidské tyrosinázy in vitro, ale také melanogenezi v buňkách vystavených UVB. Phytother. Res. 2010, 24, 1175–1180.

32. Lourith, N.; Kanlayavattanakul, M. Antioxidační aktivity a fenolické látky semene Passiflflora edulis získaného ze zbytků výroby šťávy. J. Oleo. Sci. 2013, 62, 235–240. [CrossRef]

33. Lopez-Burillo, S.; Tan, DX; Mayo, JC; Sainz, RM; Manchester, LC; Reiter, RJ Melatonin, kyselina xanthurenová, resveratrol, EGCG, vitamín C a kyselina alfa-lipoová odlišně snižují oxidační poškození DNA vyvolané činidly Fenton: studie jejich individuálních a synergických účinků. J. Pineal. Res. 2003, 34, 269–277. [CrossRef] [PubMed]

34. Satooka, H.; Kubo, I. Resveratrol jako inhibitor tyrosinázy typu kcat: potencovaný inhibitor melanogeneze. Bioorg. Med. Chem. 2012, 20, 1090–1099. [CrossRef]

35. Li, M.; Kildegaard, KR; Chen, Y.; Rodriguez, A.; Borodina, I.; Nielsen, J. De novo produkce resveratrolu z glukózy nebo ethanolu upravenými Saccharomyces cerevisiae. Metab. Ing. 2015, 32, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

36. Lim, CG; Fowler, ŽL; Hueller, T.; Schaeffer, S.; Koffffas, MA Produkce vysoce výnosného resveratrolu v upravené Escherichia coli. Appl. Environ. Microbiol. 2011, 77, 3451–3460. [CrossRef]

37. Sydor, T.; Schaeffer, S.; Boles, E. Značné zvýšení produkce resveratrolu rekombinantními průmyslovými kvasinkovými kmeny s použitím bohatého média. Appl. Environ. Microbiol. 2010, 76, 3361–3363. [CrossRef]

38. Balestrazzi, A.; Bonadei, M.; Calvio, C.; Mattivi, F.; Carbonera, D. Bakterie spojené s listem z transgenního topolu bílého produkujícího sloučeniny podobné resveratrolu: izolace, molekulární charakterizace a hodnocení tolerance oxidačního stresu. Umět. J. Microbiol. 2009, 55, 829–840. [CrossRef] [PubMed]

39. Xiao, J.; Zhang, Q.; Gao, Y.-Q.; Tang, J.-J.; Zhang, A.-L.; Gao, J.-M. Sekundární metabolity z endofytické Botryosphaeria dothidea Melia azedarach a jejich antifungální, antibakteriální, antioxidační a cytotoxické aktivity. J. Agric. Food Chem. 2014, 62, 3584–3590. [CrossRef] [PubMed]

40. Mou, Y.; Meng, J.; Fu, X.; Wang, X.; Tian, ​​J.; Wang, M.; Peng, Y.; Zhou, L. Antimikrobiální a antioxidační aktivity a vliv přídavku 1-hexadecenu na výtěžky palmarumycinu C2 a C3 v kapalné kultuře endofytické houby Berkleasmium sp. Dzf12. Molekuly 2013, 18, 15587–15599. [CrossRef] [PubMed]

41. Kerksick, C.; Willoughby, D. Antioxidační úloha doplňků glutathionu a N-acetyl-cysteinu a oxidativní stres vyvolaný cvičením. J. Int. Soc. Sportovní Nutr. 2005, 2, 38–44. [CrossRef]

42. Sonthalia, S.; Daulatabad, D.; Sarkar, R. Glutathion jako činidlo pro bělení kůže: fakta, mýty, důkazy a kontroverze. Indian J. Dermatol. Venereol. Leprol. 2016, 82, 262–272. [CrossRef]

43. Fei, L.; Wang, Y.; Chen, S. Zlepšená produkce glutathionu genovou expresí u Pichia pastoris. Bioprocess. Biosyst. Ing. 2009, 32, 729–735. [CrossRef] [PubMed]

44. Wang, C.; Zhang, J.; Wu, H.; Li, Z.; Ye, Q. Heterologní exprese genu gshF v různých vektorových systémech v Escherichia coli pro zvýšenou produkci glutathionu. J. Biotechnol. 2015, 214, 63–68. [CrossRef]

45. Palozza, P.; Krinsky, NI Astaxanthin a kanthaxanthin jsou silné antioxidanty v membránovém modelu. Oblouk. Biochem. Biophys. 1992, 267, 291–295. [CrossRef] 46. Yamamoto, K.; Hara, KY; Morita, T.; Nishimura, A.; Sasaki, D.; Ishii, J. Zvýšení produkce astaxanthinu v Xanthophyllomyces dendrorhous účinnou metodou pro úplnou deleci genů. Microb. Cell Fact. 2016, 15, 155. [CrossRef] [PubMed]

47. Tripathi, U.; Sarada, R.; Ravishankar, GA Vliv kultivačních podmínek na růst zelené řasy - Haematococcus pluvialis a produkci astaxanthinu. Acta Physiol. Rostlina. 2002, 24, 323–329. [CrossRef]

48. Mueller, L.; Boehm, V. Antioxidační aktivita beta-karotenových sloučenin v různých in vitro testech. Molekuly 2011, 16, 1055–1069. [CrossRef]

49. Zhu, F.; Lu, L.; Fu, S.; Zhong, X.; Hučení.; Deng, Z. Cílené inženýrství a scale-up nadprodukce lykopenu u Escherichia coli. Proces. Biochem. 2015, 50, 341–346. [CrossRef]

50. Nelis, HJ; De Leenheer, A. P., Reinvestigation of Brevibacterium sp. kmen KY-4313 jako zdroj kanthaxanthinu. Appl. Environ. Microbiol. 1989, 55, 2505–2510.

51. Sindhu, ER; Preethi, KC; Kuttan, R. Antioxidační aktivita karotenoid luteinu in vitro a in vivo. Indian J. Exp. Biol. 2010, 843–848.

52. Del Campo, JA; Moreno, J.; Rodríguez, H.; Angeles Vargas, M.; Rivas, J.; Guerrero, MG Obsah karotenoidů v chlorofytových mikrořasách: faktory určující akumulaci luteinu u Muriellopsis sp. (Chlorophyta). J. Biotechnol. 2000, 76, 51–59. [CrossRef]

53. Venugopalan, V.; Tripathi, SK; Nahar, P.; Saradhi, PP; Das, RH; Gautam, HK Charakterizace izomerů kanthaxanthinu izolovaných z nové půdy Dietzia sp. a jejich antioxidační aktivity. J. Microbiol. Biotechnol. 2013, 23, 237–245. [CrossRef]

54. Mahapatra, S.; Banerjee, D. Hodnocení in vitro antioxidační účinnosti exopolysacharidu z endofytického Fusarium solani SD5. Int. J. Biol. Macromol. 2013, 53, 62–66. [CrossRef]

55. Zheng, LP; Zou, T.; Ma, YJ; Wang, JW; Zhang, YQ Antioxidant a DNA poškození chránící aktivita exopolysacharidů z endofytické bakterie Bacillus cereus SZ1. Molekuly 2016, 21, 174. [CrossRef] [PubMed]

56. Liu, J.; Luo, J.; Ano, H.; Sun, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Produkce, charakterizace a antioxidační aktivity in vitro exopolysacharidů z endofytické bakterie Paenibacillus polymyxa EJS-3. Carbohydr. Polym. 2009, 78, 275–281. [CrossRef]

57. Liu, J.; Luo, J.; Ano, H.; Sun, Y.; Lu, Z.; Zeng, X. Optimalizace média a strukturní charakterizace exopolysacharidů z endofytické bakterie Paenibacillus polymyxa EJS-3. Carbohydr. Polym. 2010, 79, 206–213. [CrossRef]

58. Xiao, R.; Zheng, Y. Přehled extracelulárních polymerních látek mikrořas (EPS) a jejich aplikace. Biotechnol. Adv. 2016, 34, 1225–1244. [CrossRef]

59. Chen, Y.; Mao, W.; Tao, H.; Zhu, W.; Qi, X.; Chen, Y. Strukturální charakterizace a antioxidační vlastnosti exopolysacharidu produkovaného mangrovovou endofytickou houbou Aspergillus sp. Y16. Bioresour. Technol. 2011, 102, 8179–8184. [CrossRef] [PubMed]

60. Serrato, RV; Sassaki, GL; Cruz, LM; Pedrosa, FO; Gorin, PA; Iacomini, M. Kultivační podmínky pro produkci kyselého exopolysacharidu bakterií Burkholderia tropica fixující dusík. Umět. J. Microbiol. 2006, 52, 489–493. [CrossRef] [PubMed]

61. Trabelsi, L.; Chaieb, O.; Mnari, A.; Abid-Essafifi, S.; Aleya, L. Parciální charakterizace a antioxidační a antiproliferační aktivity vodných extracelulárních polysacharidů z termofilních mikrořas Graesiella sp. Doplněk BMC. Alternativní. Med. 2016. [CrossRef]

62. Romay, C.; Gonzalez, R.; Ledon, N.; Ramirez, D.; Rimbau, V. C-fykocyanin: biliprotein s antioxidačními, protizánětlivými a neuroprotektivními účinky. Curr. Proteinový Pept. Sci. 2003, 4, 207–216. [CrossRef] [PubMed]

63. Tasar, OC; Erdal, S.; Taskin, M. Produkce chitosanu psychrotolerantním Rhizopus oryzae v nesterilních podmínkách otevřené fermentace. Int. J. Biol. Macromol. 2016, 89, 428–433. [CrossRef]

64. Asachi, R.; Karimi, K. Zvýšená produkce etanolu a chitosanu z pšeničné slámy Mucor indicus s minimální spotřebou živin. Proces. Biochem. 2013, 48, 1524–1531. [CrossRef]

65. Logesh, AR; Thillaimaharani, KA; Sharmila, K.; Kalaiselvam, M.; Raffiffiffi, SM Produkce chitosanu z endolitických hub izolovaných z mangrovového prostředí a jeho antagonistická aktivita. Asijský Pac. J. Trop. Biomed. 2012, 2, 140–143. [CrossRef]

66. Ordonñez, L.; García, J.; Bolanños, G. Produkce chitinových a chitin-glukanových komplexů z biomasy Aspergillus niger pomocí podkritické vody. In Proceedings of the Ibero-American Conference on Supercritical Fluids, Cartagena, Kolumbie, 1.–5. dubna 2013.

67. Guo, J.; Rao, Z.; Yang, T.; Man, Z.; Xu, M.; Zhang, X. Vysoká produkce melaninu novým izolátem Streptomyces kathirae. FEMS Microbiol. Lett. 2014, 357, 85–91. [CrossRef] [PubMed]

68. Tarangini, K.; Mishra, S. Produkce melaninu půdním mikrobiálním izolátem na extraktu z ovocného odpadu: dvoustupňová optimalizace klíčových parametrů. Biotechnol. rep. 2014, 4, 139–146. [CrossRef] [PubMed]

69. Beckstead, AA; Zhang, Y.; Hilmer, JK; Smith, HJ; Bermel, E.; Foreman, CM Ultrarychlá deaktivace bakteriálního pigmentu violaceinu v excitovaném stavu. J. Phys. Chem. 2017. [CrossRef] [PubMed]

70. Ahmad, WA; Yusof, NZ; Nordin, N.; Zakaria, ZA; Rezali, MF Výroba a charakterizace violaceinu lokálně izolovaným Chromobacterium violaceum pěstovaným v zemědělských odpadech. Appl. Biochem. Biotechnol. 2012, 167, 1220–1234. [CrossRef]

71. Wang, H.; Jiang, P.; Lu, Y.; Ruan, Z.; Jiang, R.; Xing, X.-H. Optimalizace kultivačních podmínek pro produkci violaceinu novým kmenem Duganella sp. B2. Biochem. Ing. J. 2009, 44, 119–124. [CrossRef]

72. Pathák, J.; Sonker, AS; Richa, R.; Rajneesh, R.; Kannaujiya, VK; Singh, V.; Ahmed, H. Screening a částečné čištění fotoprotektivního pigmentu scytoneminu z krust sinic žijících na historických památkách ve Varanasi a okolí v Indii. Microbiol. Res. 2017. [CrossRef]

73. Chen, J.; Zhao, L.; Xu, J.; Yang, R.; On je.; Yan, X. Stanovení oxidovaného scytoneminu v Nostoc commune Vauch kultivovaném za různých podmínek vysokoúčinnou kapalinovou chromatografií spojenou s hmotnostní spektrometrií s trojitým kvadrupólem. J. Appl. Phycol. 2013, 25, 1001–1007. [CrossRef]

74. Nakashima, T.; Anzai, K.; Kuwahara, N.; Komaki, H.; Miyadoh, S.; Harayama, S. Fyzikálně chemické vlastnosti inhibitoru tyrosinázy produkovaného Streptomyces roseolilacinus NBRC 12815. Biol. Pharm. Býk. 2009, 32, 832–836. [CrossRef]

75. Kurbanoglu, EB; Ozdal, M.; Ozdal, OG; Algur, OF Zvýšená produkce prodigiosinu u Serratia marcescens MO-1 pomocí peptonu z beraního rohu. Braz. J. Microbiol. 2015, 46, 631–637. [CrossRef] [PubMed]

76. Boric, M.; Danevčič, T.; Stopar, D. Prodigiosin z Vibrio sp. DSM 14379; nový UV ochranný pigment. Microb. Ecol. 2011, 62, 528–536. [CrossRef]

77. Lawrence, KP; Gacesa, R.; Dlouhý, PF; Young, AR Molekulární fotoprotekce lidských keratinocytů in vitro přirozeně se vyskytující aminokyselinou polythenem podobnou mykosporinu. Br. J. Dermatol. 2017, 178, 1353–1363. [CrossRef]

78. Rastogi, RP; Incharoensakdi, A. Charakterizace sloučenin UV screeningu, aminokyselin podobných mykosporinu a scytoneminu v sinici Lyngbya sp. CU2555. FEMS Microbiol. Ecol. 2014, 87, 244–256. [CrossRef] [PubMed]

79. Libkind, D.; Moline, M.; Sommaruga, R.; Sampaio, JP; van Broock, M. Fylogenetická distribuce houbového cyklosporinu v rámci Pucciniomycotina (Basidiomycota). Kvasinky (Chichester, Anglie) 2011, 28, 619–627. [CrossRef] [PubMed]

80. Kogej, T.; Gostincar, C.; Volkmann, M.; Gorbushina, AA; Gunde-Cimerman, N.; Kogej, T.; Gorbushina, AA Mykosporiny v extremofilních houbách - nové komplementární osmolyty? Environ. Chem. 2006, 3, 105–110. [CrossRef]

81. Wei, S.; Xu, N.; Ji, Z. Identifikace kyseliny kojové produkující Aspergillus afflatus F52. Acta Microbiol. Hřích. 2014, 1155–1160.

82. El-Aasar, SA Studie kulturních podmínek produkce kyseliny kojové Aspergillus parasiticus. Int. J. Agric. Biol. 2006, 8, 468–473.

83. Mohamad, R.; Ariffff, AB Biotransformace různých zdrojů uhlíku na kyselinu kojovou pomocí buněčného enzymového systému A. aflatus Link 44-1. Biochem. Ing. J. 2007, 35, 203–209. [CrossRef]

84. Zhao, L.; Kim, JC; Paik, MJ; Lee, W.; Hur, JS Multifunkční a možná kožní UV ochrana, (3R)-5-hydroxymellein, produkovaný endolitickou houbou izolovanou z Parmotrema austrosinense. Molekuly 2016, 22, 26. [CrossRef]

85. Robledo, A.; Aguilera-Carbo, A.; Rodriguez, R.; Martinez, JL; Garza, Y.; Aguilar, CN Výroba kyseliny ellagové pomocí Aspergillus niger při fermentaci zbytků granátového jablka v pevné fázi. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008, 35, 507–513. [CrossRef]

86. Smith, WP Účinky lokální L(plus) kyseliny mléčné a kyseliny askorbové na bělení kůže. Int. J. Cosmet. Sci. 1999, 21, 33–40. [CrossRef] [PubMed]

87. Maas, RH; Springer, J.; Eggink, G.; Weusthuis, RA Metabolismus xylózy u houby Rhizopus oryzae: vliv růstu a dýchání na produkci kyseliny L plus -mléčné. J. Ind. Microbiol. Biotechnol. 2008, 35, 569–578. [CrossRef]

88. Shih, IL; Van, YT Výroba poly-(gama-glutamové kyseliny) z mikroorganismů a její různé aplikace. Bioresour. Technol. 2001, 79, 207–225. [CrossRef]

89. Schallreuter, KU; Wood, JW Možný mechanismus účinku kyseliny azelaové v lidské epidermis. Oblouk. Dermatol. Res. 1990, 282, 168–171. [CrossRef]

90. Balina, LM; Graupe, K. Léčba melasmatu je 20 procent kyseliny azelaové oproti 4 procentům hydrochinonového krému. Int. J. Dermatol. 1991, 30, 893–895. [CrossRef]

91. Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Morpurgo, G.; Breathnach, AS Identifikace inhibitorů tyrosinázy v kulturách Pityrosporum a jejich melanocytotoxický účinek. Pigment. Cell 1979, 4, 234–243.

92. Yin, C.; Zhang, C.; Gao, M. Enzymově katalyzovaná syntéza sukcinátu vitaminu E za použití chemicky modifikovaného none-435. Brada. J. Chem. Ing. 2011, 19, 135–139. [CrossRef]

93. Wicken, AJ; Gibbens, JW; Knox, KW Srovnávací studie izolace membránové lipoteichoové kyseliny z fermentu Lactobacillus. J. Bacteriol. 1973, 113, 365–372.

94. Tokiwa, Y.; Kitagawa, M.; Raku, T. Enzymatická syntéza esteru kyseliny undecylenové arbutinu a jeho inhibiční účinek na houbovou tyrosinázu. Biotechnol. Lett. 2007, 29, 481–486. [CrossRef]

95. Mapari, SA; Meyer, AS; Thrane, U.; Frisvad, JC Identifikace potenciálně bezpečných slibných továren na buňky hub pro výrobu polyketidových přírodních potravinářských barviv za použití chemotaxonomického zdůvodnění. Microb. Cell Fact. 2009. [CrossRef]

96. Dufossé, L. Encyklopedie mikrobiologie, 3. vyd.; Academic Press: New York, NY, USA, 2009; mikrobiální pigmenty; s. 457–471.

97. Buenger, J.; Driller, H. Ectoin: Účinná přírodní látka zabraňující předčasnému fotostárnutí způsobenému UVA zářením. Skin Pharmacol. Physiol. 2004, 17, 232–237. [CrossRef]

98. Becker, J.; Schafer, R.; Kohlstedt, M.; Harder, BJ; Borchert, NS; Stoveken, N. Systémové metabolické inženýrství Corynebacterium glutamicum pro produkci chemického chaperonu ektoinu. Microb. Cell Fact. 2013. [CrossRef] [PubMed]

99. Botta, C.; Di Giorgio, C.; Sabatier, AS; De Meo, M. Hodnocení genotoxicity viditelného světla (400–800 nm) a fotoprotekce řezu, L-ergothioneinu a mannitolu a čtyř opalovacích krémů. J. Photochem. Photobiol. B. 2008, 91, 24–34. [CrossRef] [PubMed]

100. Pugh, S.; McKenna, R.; Halloum, I.; Nielsen, DR Engineering Escherichia coli pro výrobu obnovitelného benzylalkoholu. Metab. Ing. 2015, 2, 39–45. [CrossRef]

101. Ni, J.; Tao, F.; Du, H.; Xu, P. Napodobování přirozené cesty pro biosyntézu de novo: přirozená produkce vanilinu z dostupných zdrojů uhlíku. Sci. Rep. 2015. [CrossRef] [PubMed]

102. Yamada, M.; Okada, Y.; Yoshida, T.; Nagasawa, T. Produkce vanilinu pomocí buněk Escherichia coli nadměrně exprimujících isoeugenolmonooxygenázu Pseudomonas putida. Biotechnol. Lett. 2008, 30, 665–670. [CrossRef]

103. Zhao, L.-Q.; Sun, Z.-H.; Zheng, P.; Zhu, L.-L. Biotransformace isoeugenolu na vanilin novým kmenem Bacillus fusiformis. Biotechnol. Lett. 2005, 27, 1505–1509. [CrossRef]

104. Ravasio, D.; Wendland, J.; Walther, A. Hlavní příspěvek Ehrlichovy cesty k výrobě 2-fenylethanolu/růže v Ashbya gossypii. FEMS Yeast Res. 2014, 14, 833–844. [CrossRef]

105. Eichmann, MMW; Schrader, J. Vodně-organický dvoufázový bioproces pro účinnou výrobu přírodních aromatických chemikálií 2-fenylethanolu a 2-fenylethylacetátu s kvasinkami. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2006, 71, 440–443. [CrossRef]

106. Willrodt, C.; David, C.; Cornelissen, S.; Buhler, B.; Julsing, MK; Schmid, A. Inženýrství produktivity rekombinantní Escherichia coli pro tvorbu limonenu z glycerolu v minimálním médiu. Biotechnol. J. 2014, 9, 1000–1012. [CrossRef]

107. Dobler, L.; de Carvalho, BR; Alves, S.; Neves, BC; Freire, G.; Almeida, RV Zvýšená produkce rhamnolipidů Pseudomonas aeruginosa nadměrně exprimující estA v jednoduchém médiu. PloS ONE 2017, 12, e0183857. [CrossRef]

108. Desai, JD; Banát, IM Mikrobiální výroba povrchově aktivních látek a jejich komerční potenciál. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 1997, 47–64.

109. Castelblanco-Matiz, LM; Barbachano-Torres, A.; Ponce-Noyola, T.; Ramos-Valdivia, AC; Cerda García-Rojas, CM; Flores-Ortiz, CM Produkce karotenoidů a genová exprese v mutantním kmeni Xanthophyllomyces dendrorhous nadměrně produkujícím astaxanthin. Oblouk. Microbiol. 2015, 197, 1129–1139. [CrossRef] [PubMed]

110. Berman, J.; Zorrilla-Lopez, U.; Farre, G.; Zhu, C.; Sandmann, G.; Twyman, RM; Capell, T.; Christou, P. Nutričně významné karotenoidy jako spotřební produkty. Phytochem. Rev. 2015, 14, 727–743. [CrossRef]

111. Henriquez, V.; Escobar, C.; Galarza, J.; Gimpel, J. Karotenoidy v mikrořasách. In Carotenoids in Nature; Strange, E., Ed.; Springer International Publishing: New York, NY, USA, 2016; s. 219–237.

112. Lau, N.-S.; Matsui, M.; Abdullah, AA-A. Sinice: fotoautotrofní mikrobiální továrny pro udržitelnou syntézu průmyslových produktů. J. Biomed. Biotechnol. 2015, 2, 1–9. [CrossRef] [PubMed]

113. Das, A.; Yoon, SH; Lee, SH; Kim, JY; Oh, DK; Kim, SW Aktualizace mikrobiální produkce karotenoidů: aplikace současných nástrojů metabolického inženýrství. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007, 77, 505–512. [CrossRef]

114. Mata-Gomez, LC; Montanez, JC; Mendez-Zavala, A.; Aguilar, CN Biotechnologická produkce karotenoidů kvasinkami: Přehled. Microb. Cell Fact. 2014. [CrossRef]

115. Liu, J.; Wang, X.; Pu, H.; Liu, S.; Kan, J.; Jin, C. Nedávné pokroky v endofytických exopolysacharidech: produkce, strukturní charakterizace, fyziologická úloha a biologická aktivita. Carbohydr. Polym. 2017, 157, 1113–1124. [CrossRef] [PubMed]

116. Liu, F.; Ooi, VE; Chang, ST Aktivita pohlcování volných radikálů houbových polysacharidových extraktů. Life Sci. 1997, 60, 763-771. [CrossRef]

117. Jin, M.; Cai, YX; Li, JR; Zhao, H. 1, 10-fenantrolin-Fe2 plus oxidační test hydroxylového radikálu produkovaného H2O2/Fe. Prog. Biochem. Biophys. 1996, 23, 553–555.

118. Chen, B.; Vy, W.; Huang, J.; Yu, Y.; Chen, W. Izolační a antioxidační vlastnost extracelulárního polysacharidu z Rhodella reticulata. World J. Microbiol. Biotechnol. 2010, 26, 833–840. [CrossRef]

119. Cirulis, JT; Scott, JA; Ross, GM Řízení oxidačního stresu mikrořasami. Umět. J. Physiol. Pharmacol. 2013, 91, 15–21. [CrossRef] [PubMed]

120. Hassan, HM Cytotoxicita oxyradikálů a vývoj superoxiddismutáz. v kyslíku, genové expresi a buněčné funkci; Massaro, D., Clerch, L., Eds.; Marcel Dekker: New York, NY, USA, 1997.

121. Bruno-Barcena, JM; Azcarate-Peril, MA; Hassan, HM Role antioxidačních enzymů v odolnosti bakterií vůči organickým kyselinám. Appl. Environ. Microbiol. 2010, 76, 2747–2753. [CrossRef] [PubMed]

122. Rahman, K. Studie o volných radikálech, antioxidantech a kofaktorech. Clin. Interv. Stárnutí 2007, 2, 219–236.

123. Abbott, DA; Suir, E.; Duong, GH; de Hulster, E.; Pronk, JT; van Maris, AJ Nadměrná exprese katalázy snižuje oxidační stres vyvolaný kyselinou mléčnou u Saccharomyces cerevisiae. Appl. Environ. Microbiol. 2009, 75, 2320–2325. [CrossRef]

124. Shao, N.; Beck, CF; Lemaire, SD; Krieger-Liszkay, A. Fotosyntetický elektron ovlivňuje signalizaci H2O2 inaktivací katalázy u Chlamydomonas reinhardtii. Planta 2008, 228, 1055–1066. [CrossRef]

125. Evropská komise. Zákaz testování na zvířatech. Dostupné online: https://ec.europa.eu/growth/sectors/ cosmetics/animal-testing_en (vstup 14. dubna 2019).

126. Gao, Q.; Garcia-Pichel, F. Mikrobiální ultrafialové opalovací krémy. Nat. Microbiol. 2011, 9, 791–802. [CrossRef]

127. Plonka, PM; Grabacka, M. Syntéza melaninu v mikroorganismech-biotechnologické a medicínské aspekty. Acta Biochim. Pol. 2006, 53, 429–443.

128. Nosanchuk, JD; Stark, RE; Casadevall, A. Fungal melanin: Co víme o struktuře? Přední. Microbiol. 2015. [CrossRef]

129. Sansinenea, E.; Ortiz, A. Melanin: fotoprotekce pro biopesticidy založené na Bacillus thuringiensis. Biotechnol. Lett. 2015, 37, 483–490. [CrossRef] [PubMed]

130. Matsui, K.; Nazififi, E.; Hirai, Y.; Wada, N.; Matsugo, S.; Sakamoto, T. Sinicový pigment scytonemin absorbující UV záření vykazuje aktivitu pohlcující radikály. J. Gen. Appl. Microbiol. 2012, 58, 137–144. [CrossRef]

131. Garcia-Pichel, F.; Sherry, ND; Castenholz, RW Důkaz pro ultrafialovou opalovací roli extracelulárního pigmentu scytoneminu v suchozemské sinici Chlorogloeopsis sp. Photochem. Photobiol. 1992, 56, 17–23. [CrossRef]

132. Rastogi, RP; Sonani, RR; Madamwar, D. Cyanobacterial sunscreen scytonemin: role ve fotoprotekci a biomedicínském výzkumu. Appl. Biochem. Biotechnol. 2015, 176, 1551–1563. [CrossRef]

133. Darshan, N.; Manonmani, HK Prodigiosin a jeho potenciální aplikace. J. Food Sci. Technol. 2015, 52, 5393–5407. [CrossRef]

134. Duran, N.; Justo, GZ; Duran, M.; Brocchi, M.; Cordi, L.; Tasic, L. Pokroky v Chromobacterium violaceum a vlastnosti violaceinu-jeho hlavního sekundárního metabolitu: Přehled. Biotechnol. Adv. 2016, 34, 1030–1045. [CrossRef]

135. Colabella, F.; Moline, M.; Libkind, D. UV opalovací krémy mikrobiálního původu: cyklosporin a aminokyseliny podobné mykosporinu. Nedávný Pat. Biotechnol. 2014, 8, 179–193. [CrossRef]

136. Khosravi, S.; Khodabandeh, S.; Agh, N.; Bakhtiarian, M. Účinky slanosti a ultrafialového záření na bioakumulaci aminokyselin podobných mykosporinu v Artemia z jezera Urmia (Írán). Photochem. Photobiol. 2013, 89, 400–405. [CrossRef]

137. Gorbushina, AA; Whitehead, K.; Dornieden, T.; Niesse, A.; Schulte, A.; Živé ploty, JI Kolonie černých hub jako jednotky přežití: hyfální cyklosporin syntetizovaný mikrokoloniálními houbami žijícími ve skalách. Umět. J. Bot. 2003, 81, 131–138. [CrossRef]

138. Gillbro, JM; Olsson, MJ Melanogeneze a mechanismy činidel zesvětlujících pokožku – existující a nové přístupy. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 210–221. [CrossRef] [PubMed]

139. Smit, N.; Vilanová, J.; Pavel, S. Honba za přírodními prostředky pro bělení kůže. Int. J. Mol. Sci. 2009, 10, 5326–5349. [CrossRef] [PubMed]

140. Pillaiyar, T.; Maničkam, M.; Namasivayam, V. Činidla pro bělení kůže: perspektiva inhibitorů tyrosinázy z lékařské chemie. J. Enzyme Inhib Med. Chem. 2017, 32, 403–425. [CrossRef]

141. Pillaiyar, T.; Namasivayam, V.; Maničkam, M.; Jung, SH Inhibitory melanogeneze: Aktualizovaný přehled. J. Med. Chem. 2018, 61, 7395–7418. [CrossRef] [PubMed]

142. Ha, TJ; Yang, MS; Jang, DS; Choe, SU; Park, GH Inhibiční aktivity derivátů flavanonu izolovaných ze Sophora flavecens pro melanogenezi. Býk. Korean Chem. Soc. 2001, 22, 97–99.

143. Parvez, S.; Kang, M.; Chung, HS; Cho, C.; Hong, MC; Shin, MK Průzkum a mechanismus depigmentačních a zesvětlujících látek. Phytother. Res. 2006, 20, 921–934. [CrossRef]

144. Rosfarizan, M.; Mohd, SM; Nurashikin, S.; Madihah, MS; Arbakariya, BA Kyselina kojová: Aplikace a vývoj fermentačního procesu pro výrobu. Biotech. Mol. Biol. 2010, 5, 24–37.

145. Ortiz-Ruiz, CV; Berna, J.; Tudela, J.; Varon, R.; Garcia-Canovas, F. Působení kyseliny ellagové na dráhu biosyntézy melaninu. J. Dermatol. Sci. 2010, 5, 24–37. [CrossRef]

146. Ventura, J.; Belmares, R.; Aguilera-Carbo, A.; Gutiérrez-Sanchez, G.; Rodríguez-Herrera, R. Plísňová biodegradace taninů z keře kreosotu (Larrea tridentata) a keře dehtového (Fluorensia cernua) pro produkci kyseliny galové a ellagové. Food Technol. Biotechnol. 2008, 46, 213–217.

147. Sepúlveda, L.; Ascacio, A.; Rodríguez-Herrera, R.; Aguilera-Carboó, A.; Aguilar, CN Kyselina ellagová: Biologické vlastnosti a biotechnologický vývoj pro výrobní procesy. Afr. J. Biotechnol. 2011, 10, 4518–4523.

148. Breathnach, AC; Nazzaro-Porro, M.; Passi, S.; Zina, G. Terapie kyselinou azelaovou při poruchách pigmentace. Clin. Dermatol. 1989, 7, 106–119. [CrossRef]

149. Sieber, MA; Hegel, JK Kyselina azelaová: Vlastnosti a způsob účinku. Skin Pharmacol. Physiol. 2014, 27, 9–17. [CrossRef] [PubMed]

150. Breathnach, AS Melaninová hyperpigmentace kůže: melasma, lokální léčba kyselinou azelaovou a další terapie. Cutis 1989, 7, 106–119.

151. Usuki, A.; Ohashi, A.; Sato, H.; Ochiai, Y.; Ichihashi, M.; Funasaka, Y. Inhibiční účinek kyseliny glykolové a kyseliny mléčné na syntézu melaninu v buňkách melanomu. Exp. Dermatol. 2003, 12, 43–50. [CrossRef] [PubMed]

152. Zhang, ZY; Jin, B.; Kelly, JM Výroba kyseliny mléčné z obnovitelných materiálů houbami Rhizopus. Biochem. Ing. J. 2007, 35, 251–263. [CrossRef]

153. Liu, X.; Liu, F.; Liu, S.; Li, H.; Ling, P.; Zhu, X. Poly-gama-glutamát z Bacillus subtilis inhibuje aktivitu tyrosinázy a melanogenezi. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2013, 97, 9801–9809. [CrossRef]

154. Mohorˇciˇc, M.; Friedrich, J.; Renimel, I.; André, P.; Mandin, D.; Chaumont, J.-P. Výroba melaninového bělícího enzymu houbového původu a jeho aplikace v kosmetice. Biotechnol. Bioprocess. Ing. 2007, 12, 200–206. [CrossRef]

155. Antonopoulou, I.; Varriale, S.; Topakas, E.; Rova, U.; Christakopoulos, P.; Faraco, V. Enzymatická syntéza bioaktivních sloučenin s vysokým potenciálem pro kosmeceutické aplikace. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2016, 100, 6519–6543. [CrossRef]

156. Sugimoto, K.; Nomura, K.; Nishimura, T.; Kiso, T.; Sugimoto, K.; Kuriki, T. Syntézy alfa-arbutin-alfa-glykosidů a jejich inhibiční účinky na lidskou tyrosinázu. J. Biosci. Bioeng. 2005, 99, 272–276. [CrossRef]

157. Sekhon Randhawa, KK; Rahman, PK Rhamnolipidové biosurfaktanty – minulý, současný a budoucí scénář globálního trhu. Přední. Microbiol. 2014. [CrossRef]

158. Marchant, R.; Banát, IM Biosurfaktanty: udržitelná náhrada za chemické povrchově aktivní látky? Biotechnol. Lett. 2012, 34, 1597–1605. [CrossRef] [PubMed]

159. Lang, S.; Wullbrandt, D. Biosyntéza lipidů rhamnózy, mikrobiální produkce a aplikační potenciál. Appl. Microbiol. Biotechnol. 1999, 51, 22–32. [CrossRef]

160. Haba, E.; Pinazo, A.; Jauregui, O.; Espuny, MJ; Infante, MR; Manresa, A. Fyzikálně chemická charakterizace a antimikrobiální vlastnosti rhamnolipidů produkovaných Pseudomonas aeruginosa 47T2 NCBIM 40044. Biotechnol. Bioeng. 2003, 81, 316–322. [CrossRef]

161. Piljac, G.; Piljac, T. Použití rhamnolipidů při hojení ran, léčbě popáleninového šoku, aterosklerózy, transplantací orgánů, deprese, schizofrenie a kosmetiky. Patent USA č. US7262171B1. 2000.

162. Tuli, HS; Chaudhary, P.; Beniwal, V.; Sharma, AK Mikrobiální pigmenty jako přírodní zdroje barev: současné trendy a budoucí perspektivy. J. Food Sci. Tech. 2015, 52, 4669–4678. [CrossRef] [PubMed]

163. Caro, Y.; Venkatachalam, M.; Lebeau, J.; Fouillaud, M.; Dufossé, L. Pigmenty a barviva z vláknitých hub. Fungal Metab. 2017, 499–568. [CrossRef] 164. Souza, PN; Grigoletto, TL; Abreu, LM; Guimarães, LH; Santos, C.; Galvão, LR; Cardoso, PG Výroba a chemická charakterizace pigmentů ve vláknitých houbách. Mikrobiologie 2016, 162, 12–22.

165. Rao, N.; Prabhu, M.; Xiao, M.; Li, WJ Plísňové a bakteriální pigmenty: Sekundární metabolity s širokým uplatněním. Přední. Microbiol. 2017. [CrossRef]

166. Kuddus, M.; Singh, P.; Thomas, G.; Al-Hazimi, A. Nedávný vývoj ve výrobě a biotechnologických aplikacích C-fykocyaninu. Biomed. Res. Int. 2013. [CrossRef] [PubMed]

167. Nicoletti, M. Microalgae Nutraceuticals. Jídlo 2016, 5, 54. [CrossRef] [PubMed]

168. Graverholt, OS; Eriksen, NT Heterotrofní vsádkové a kontinuální kultivace s vysokou buněčnou hustotou Galdieria sulphuraria a produkce fykocyaninu. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2007, 77, 69–75. [CrossRef]

169. Carroll, AL; Desai, SH; Atsumi, S. Mikrobiální produkce vonných a chuťových sloučenin. Curr. Opin. Chem. Biol. 2016, 37, 8–15. [CrossRef] [PubMed]

170. Longo, MA; Sanromán, MA Výroba potravinářských aromatických sloučenin: mikrobiální a enzymatické metodiky. Food Technol. Biotechnol. 2006, 44, 335–353.

171. Kempf, B.; Bremer, E. Příjem a syntéza kompatibilních rozpuštěných látek jako reakce mikrobiálního stresu na prostředí s vysokou osmolalitou. Oblouk. Microbiol. 1998, 170, 319–330. [CrossRef]

172. Soccol, ČR; Medeiros, AB; Vandenberghe, LP; Wojciechowski, AL Aromatizační sloučeniny produkované houbami, kvasinkami a bakteriemi. Handb. Food Prod. Manuf. 2007, 1, 179–191.

173. Vandamme, EJ Bioflocha a vůně prostřednictvím hub a jejich enzymů. Potápěči plísní. 2003, 13, 153–166.

174. Carrau, F.; Boido, E.; Dellacassa, E. Diverzita kvasinek a příchutě. v houbových metabolitech; Mérillon, JM, Ramawat, K., Eds.; Springer International Publishing: Cham, Švýcarsko, 2016; s. 1–29.

175. Priefert, H.; Rabenhorst, J.; Steinbüchel, A. Biotechnologická výroba vanilinu. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2001, 56, 296–314. [CrossRef]

176. Kunjapur, AM; Tarasová, Y.; Prather, KLJ Syntéza a akumulace aromatických aldehydů v upraveném kmeni Escherichia coli. J. Am. Chem. Soc. 2014, 136, 11644–11654. [CrossRef] [PubMed]

177. Alonso-Gutierrez, J.; Chan, R.; Bath, TS; Adams, PD; Keasling, JD; Petzold, CJ Metabolické inženýrství Escherichia coli pro výrobu limonenu a perillylalkoholu. Metab. Ing. 2013, 19, 33–41. [CrossRef]

178. Okino, T.; Qi, S.; Matsuda, H.; Murakami, M.; Yamaguchi, K. Nostopeptiny A a B, inhibitory elastázy ze sinice Nostoc minutum. J. Nat. Prod. 1997, 60, 158–161. [CrossRef]

179. Georgousaki, K.; DePedro, N.; Činčila, A.; Aliagiannis, N.; Vicente, F.; de Castro, P.; Fotinos, S.; Genilloud, O.; Fokialakis, N. Vysoce výkonný screening mikrobiální biologické rozmanitosti pro objev nových kosmeceutických látek. Panta Med. 2015. [CrossRef]

180. Georgousaki, K.; Tsafantakis, N.; Cheilari, A.; Gumeni, S.; González, I.; González, V.; José, RT; Genilloud, O.; Fotinos, S.; Trougakos, I.; a kol. Objev nových kosmeceutických látek z endofytických mikroorganismů španělské biodiverzity. Planta Med. 2017. [CrossRef]

181. Sykiotis, GP; Bohmann, D. Stresem aktivované transkripční faktory cap'n'collar ve stárnutí a lidských chorobách. Sci. Signál. 2010. [CrossRef] [PubMed]

182. Wedel, S.; Manola, M.; Cavinato, M.; Trougakos, IP; Jansen-Durr, P. Zacílení mechanismů kontroly kvality proteinů přírodními produkty na podporu zdravého stárnutí. Molekuly 2018, 23, 1219. [CrossRef]

183. Morimoto, RI; Cuervo, AM Proteostáza a proteom stárnutí ve zdraví a nemoci. J. Gerontol. Biol. Sci. Med. Sci. 2014. [CrossRef] [PubMed]

184. Huang, L.; Chen, CH Regulátory proteazomu: aktivátory a inhibitory. Curr. Med. Chem. 2009, 16, 931–939. [CrossRef]

185. Peyrat, LA; Eparvier, V.; Eydoux, C.; Guillemot, JC; Litaudon, M.; Stien, D. Betulinová kyselina, první triterpenoid lupinového typu izolovaný z obou Phomopsis sp. a jeho hostitelská rostlina Diospyros carbonara Benoist. Chem. Biodivers. 2017. [CrossRef] [PubMed]

Další informace: david.deng@wecistanche.com WhatApp:86 13632399501