Party1: Protizánětlivé a antioxidační vlastnosti prosa (Eleusine Coracana (L.) Gaertn.) odrůd pěstovaných na Srí Lance

Pro více informací Kontakttina.xiang@wecistanche.com

Prevalence zánětlivých onemocnění a onemocnění souvisejících s oxidativním stresem celosvětově roste, což vytváří rostoucí poptávku po nových zdrojíchprotizánětlivéagenti aantioxidanty. Tato studie byla zaměřena na stanovení in vitro arachidonátové {{0}}lipoxygenázy (A5-LOX), xanthinoxidázy (XO), hyaluronidázy, inhibičních aktivit oxidativního vzplanutí a antioxidačních vlastností Ravi, Rawana a Oshadha prstové odrůdy prosa používající etanolové a metanolové extrakty. Mezi všemi extrakty methanolový extrakt z Oshadhy vykazoval nejvyšší inhibiční aktivity A5-LOX (ICsvalue∶ 484,42 ug/ml) a XO (ICsvalue∶764,34ug/ml). Všechny extrakty vykazovaly méně než 50procentní inhibiční aktivitu hyaluronidázy při koncentraci 1 mg/ml, methanolické extrakty vykazovaly mírný inhibiční potenciál na reaktivní formy kyslíku (ROS) generované z fagocytů plné krve, s hodnotami IC0v rozmezí mezi 26,9 a 27,7 ug/ml ve srovnání s ibuprofenem (IC. hodnota: 11,18 ug/ml). Všechny extrakty vykazovaly silnou inhibici ROS produkovaných z polymorfonukleárních neutrofilů izolovaných z lidské krve ve srovnání s ibuprofenem (ICshodnota: 2,47 ug/ml) a hodnoty ICs methanolických a ethanolových extraktů se pohybovaly od 0,29 do 0,47 ug/ml a 1,35 až 1,70 ug/ml respektive. Všechny extrakty měly významně vysoké množství fenolických sloučenin včetněflavonoidya potenciál vychytávat kationt 2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazolin-6-sulfonové) kyseliny (ABTS),2,2-difenyl-1-pikryl-hydrazyl( DPPH) a kyslíkové radikály. Kromě toho byly schopny redukovat kovové ionty a chelatovat kovové ionty, čímž ukončily reakce generující radikály. Toto je první zpráva o inhibičních vlastnostech A5-LOX, XO, hyaluronidázy a oxidativního vzplanutí jakéhokoli extraktu jakékoli odrůdy prosa pěstovaného na Srí Lance. Zjištění odhalila potenciál použití těchto extraktů z prstového prosa jako přírodních zdrojů kandidátů protizánětlivých léků. Kromě toho zjištění ukázala, že odrůdy Ravi, Rawana a Oshadha jsou dobrými zdroji antioxidantů. Proto pravidelná konzumace těchto odrůd prosa může hrát důležitou roli v prevenci a dietetickém zvládání nemocí spojených s oxidativním stresem.

Kliknutím sem se dozvíte více o produktech

1. Úvod

Zánětje obranná reakceimunnísystém k odstranění škodlivých podnětů, jako jsou patogeny, poškozené buňky a alergické nebo chemické podráždění, a také k zahájení procesu hojení. Ačkoli je zánět normální reakcí, pokud není kontrolován, nadměrný zánět vede k mnoha akutním a chronickým onemocněním. V současné době celosvětově narůstá prevalence zánětlivých onemocnění, což vytváří rostoucí poptávku po nových a účinných protizánětlivých látkách [1, 2].

Arachidonát 5-lipoxygenáza (A5-LOX) je klíčový enzym, který se podílí na biosyntéze silných mediátorů zánětlivých poruch a alergických reakcí. Katalyzuje tvorbu leukotrienů z kyseliny arachidonové [3]. Leukotrieny jsou endogenními mediátory v patogenezi řady zánětlivých onemocnění včetně astmatu, alergické rýmy, chronické bronchitidy, revmatoidní artritidy, zánětlivého onemocnění střev a alergických reakcí [3,4]. Proto je inhibice A5-LOX důležitá při prevenci a léčbě různých zánětlivých poruch.

Xanthinoxidáza (XO) katalyzuje oxidaci hypo-xanthinu na xantin a xanthinu na kyselinu močovou[5]. Inhibitory XO blokují biosyntézu kyseliny močové a následně snižují hladiny kyseliny močové a také vaskulární oxidační stres. Během katalytického působení XO se tvoří reaktivní formy kyslíku (ROS), a proto XO hraje patogenetickou roli i u jiných zánětlivých onemocnění. V důsledku toho jsou inhibitory XO důležité při léčbě různých zánětlivých onemocnění doprovázených katalytickým působením XO [2,5].

Hyaluronidáza je lysozomální enzym, který katalyzuje hydrolýzu mukopolysacharidů, jako je kyselina hyaluronová. U revmatoidní artritidy hyaluronidáza nadměrně odbourává kyselinu hyaluronovou a snižuje její množství a molekulovou hmotnost, což vede k artritickým symptomům [6]. Inhibice degradace kyseliny hyaluronové je kritická a nezbytná při kontrole patologických stavů zprostředkovaných hyaluronidázou[7].

Při zánětlivých stavech jsou imunitní buňky přitahovány k místu zánětu. Během obranných a imunologických reakcí se aktivují NADPH oxidázy sídlící v imunitních buňkách a generují ROS ve velkém množství, což vytváří oxidační vzplanutí [1, 8]. Nízká a střední množství ROS jsou prospěšná v různých fyziologických procesech. Nadprodukce ROS však dereguluje buněčné funkce, což zase zvyšuje zánětlivý stav [8,9]. Inhibice oxidativního vzplanutí indukovaného ROS je proto potenciálním prostředkem k prevenci a zvládání onemocnění zprostředkovaných zánětem.

Během oxidativní fosforylacevolné radikályvčetně ROS vznikají jako vedlejší produkty [10].Kromě normálního buněčného metabolismu existuje mnoho dalších faktorů, které vedou ke vzniku volných radikálů, a pokud rychlost tvorby volných radikálů překročí rychlost neutralizace, oxidační stres vzniká a významně se podílí na všech zánětlivých onemocněních. Protože antioxidanty jsou schopny zabránit tvorbě volných radikálů a zhášet volné radikály, je pro správné udržení fyziologických funkcí nezbytná rovnováha mezi antioxidanty a volnými radikály [8,11,12].

Proso prstové (Eleusine coracana(L.)Gaertn.) je nejdůležitější malé proso v tropech a několik terapeutických vlastností prosa prstového bylo popsáno již dříve [13-17]. U odrůd prosa, které se v současnosti pěstují a konzumují na Srí Lance, však chybí vědecké důkazy o terapeutických vlastnostech

a potenciální zdravotní přínosy pro spotřebitele. V důsledku toho je nezbytné studovat protizánětlivé a antioxidační vlastnosti odrůd srílanského prosa a rozpoznat jejich potenciál zlepšit nutriční a zdravotní stav spotřebitelů. Prevalence zánětlivých onemocnění a onemocnění souvisejících s oxidativním stresem celosvětově narůstá, což vytváří nově vznikající poptávku po nových zdrojích protizánětlivých látek a antioxidantů[1, 2]. S tímto pozadím byla tato studie zaměřena na vyhodnocení srílanských odrůd prosa pro in vitro protizánětlivé vlastnosti, pokud jde o A5-}LOX, XO, hyaluronidázu, inhibiční aktivity oxidativního vzplanutí a antioxidační vlastnosti pomocí různých antioxidačních testů .

2. Materiály a metody

2.1.Odběr a příprava vzorků. Odrůdy prosa Finger, které ministerstvo zemědělství doporučuje pro pěstování na Srí Lance, jmenovitě Ravi, Rawana a Oshadha, byly shromážděny z Field Crops Research and Development Institute (FCRDI), Mahailuppallama, Srí Lanka. Tyto odrůdy byly pěstovány na experimentálních pozemcích v Low Country Dry Zone, v FCRDI, Mahailuppallama, a semena byla certifikována službou pro certifikaci osiv Ministerstva zemědělství na Srí Lance.

Semena prosa Finger byla vyloupaná (TM 05C, Satake Cor-poration, Japonsko) a mouka z celých zrn byla získána mletím (Pulverisette 14, Fritsch, Německo) a průchodem přes 0,5 mm síto. Mouky z celých zrn byly extrahovány ethanolem a methanolem odděleně. Celozrnná mouka (100 g) byla extrahována rozpouštědlem (400 ml) přes noc při teplotě místnosti (28±2 stupně) za použití magnetického míchadla a odstřeďována při 4000 otáčkách za minutu po dobu 20 minut. Supernatant byl oddělen odděleně a zbytek byl dvakrát reextrahován za použití stejných podmínek. Supernatanty byly spojeny a odpařeny do sucha za sníženého tlaku při 40 stupních za použití rotační odparky (R-114, Buchi Labortechnik AG, Švýcarsko). Extrakty bez rozpouštědla byly až do použití pro analýzu skladovány ve vzduchotěsných skleněných nádobách při -20 stupních.

2.2. Enzymy, chemikálie a vybavení. Folin-Ciocalteu fenolové činidlo, chlorid hlinitý,2,4,6-tri(2-pyridyl)-s-triazin (TPTZ), 2,2'-azobis (2-amidinopropan) dihydrochlorid (AAPH),2,2-difenyl-1-pikrylhydrazyl (DPPH), kvercetin,6-hydroxy-2,5,7,8-tetramethylchroman{{19} }kyselina karboxylová (Trolox), kyselina ethylendiamintetraoctová (EDTA), diamonná sůl 2,2'-azino-bis(3-ethylbenzothiazolin-6-sulfonové kyseliny) (ABTS), fluorescein,3-( 2-Pyridyl)-5,6-difenyl-1,2,4-triazin-p,pdisulfonová monosodná sůl

od Sigma-Aldrich, MO, USA. HBSs* plus a HBSS byly zakoupeny od Thermo Fisher Sci-entific Inc., Massachusetts, USA. Zymosan byl zakoupen od Wako Pure Chemical Industries Ltd., Osaka, Japonsko.

Luminol (3-aminoftalhydrazid) byl zakoupen od Alfa Aesar GmbH & Co KG, Karlsruhe, Německo. Médium pro separaci lymfocytů bylo zakoupeno od MP Biomedicals, Inc., Ohio, USA. Všechny ostatní chemikálie a činidla použité v experimentech byly ACS, HPLC a analytické kvality. Ke stanovení absorpční kapacity kyslíkových radikálů byla použita fluorescenční čtečka mikrodestiček (SpectraMax-Gemini EM, Molec-ular Devices Inc., USA). Pro chemiluminiscenční testy byl použit luminometr (Luminoskan RS, Labsystems, Finsko). Pro všechny ostatní biologické testy byla použita čtečka mikrodestiček (Spectra-Max Plus384, Molecular Devices Inc, USA).

2.3. Stanovení celkového obsahu fenolů. Celkový obsah fenolů (TPC) byl stanoven podle Folin-Ciocalteuovy metody 【18】. Extrakt z prstového prosa (20ul) byl smíchán se 110 ul čerstvě připraveného 10krát zředěného Folin-Ciocalteuova činidla a 70 ul roztoku uhličitanu sodného (10 procent w/v) a inkubován při pokojové teplotě (RT) po dobu 30 minut. Absorbance byla měřena při 765 nm. Ke vynesení standardní křivky byla použita kyselina gallová (y=0,0532x plus 0,0339;r=0,9992) a TPC byla vypočtena jako mg ekvivalentů kyseliny gallové (GAE) na 100 g mouky na suchém hmotnostní základ.

2.4. Stanovení celkového obsahu flavonoidů. Celkový obsah flavonoidů (TFC) byl stanoven kolorimetrickou metodou s chloridem hlinitým [19]. Extrakt z prstového prosa (100 ul) byl smíchán s roztokem chloridu hlinitého (2 procenta w/v, 100 ul), inkubován po dobu 10 minut při teplotě místnosti a absorbance byla měřena při 415 nm. K vynesení standardní křivky byl použit kvercetin（y=0.0349x-0.2091; r²=0.9974） a TFC byl vypočten jako ekvivalenty mg kvercetinu na 100 g mouky na bázi suché hmotnosti.

2.5.Stanovení aktivity vychytávání radikálů DPPH. Schopnost vychytávat radikály DPPH byla stanovena podle metody popsané Bloisem [20]. Extrakt z prosa prstového (50 ul) byl smíchán s 90 ul methanolu a 60 ul roztoku DPPH (0,02 procenta w/v) a inkubován při teplotě místnosti ve tmě po dobu 10 minut. Hodnoty absorbance vzorku (As) a kontroly (Ac) byly měřeny při 517 nm. Jako standard byl použit Trolox. Aktivita vychytávání radikálů DPPH jako procento inhibice byla vypočtena pomocí rovnice (1). Hodnota ICs byla vypočtena pomocí grafů dávka-odpověď.

2.6. Stanovení aktivity ABTS kationtového vychytávání radikálů. Schopnost vychytávat ABTS kationtové radikály byla stanovena podle metody popsané v Re et al. [21] s některými úpravami. Roztok kationtových radikálů ABTS byl připraven inkubací 10 mg ABTS ve 2,5 ml persíranu draselného při 37 °C ve tmě po dobu 16 hodin a zředěním 7krát 50 mM fyziologickým roztokem s fosfátovým pufrem (pH 7,4). Extrakt z prstového prosa (12,5 ul) byl smíchán s fyziologickým roztokem s fosfátovým pufrem (147,5 ul) a čerstvě připraveným roztokem radikálů kationtů ABTS (40 ul) a inkubován při teplotě místnosti ve tmě po dobu 10 minut. Hodnoty absorbance vzorku (As) a kontroly (Ac) byly měřeny při 734 nm. Jako standard byl použit Trolox. Aktivita vychytávání radikálů ABTS jako procento inhibice byla vypočtena pomocí rovnice (2). Hodnota ICs byla vypočtena pomocí grafů dávka-odpověď.

2.7. Stanovení kyslíkové radikálové absorpční kapacity (ORAC). ORAC byl hodnocen podle metody popsané Ou et al.[22] s některými modifikacemi. Roztoky fluoresceinu (4,8 uM) a AAPH (40 mg/ml) byly připraveny v 75 mM fosfátovém pufru (pH 7,4). Extrakt z prosa prstového (10 ul) byl smíchán se 40 ul fosfátového pufru a 100 ul fluoresceinu a inkubován při 37 stupních po dobu 10 minut. Byl přidán AAPH (50 ul) a úbytek fluoresceinu byl měřen při excitačních a emisních vlnových délkách 494 nm a 535 nm, v daném pořadí, při 37 stupních po dobu 35 minut v 1 minutových intervalech za použití fluorescenční čtečky mikrodestiček. Jako standard byl použit Tro-lox. Byly zaznamenány hodnoty plochy pod křivkou (AUC) vzorku (AUC), kontroly (AUC) a Troloxu (AUC-). Hodnota ORAC byla vypočtena pomocí rovnice (3), kde konc. znamená soustředění. Výsledky byly vyjádřeny jako ekvivalenty mg Troloxu na 100 g mouky na bázi suché hmotnosti.

2.8. Stanovení chelatační (FIC) aktivity železných iontů. Schopnost chelatovat železnaté ionty byla stanovena podle metody popsané Carterem [23]. Extrakt z prosa (100 ul) byl smíchán s 1 mM roztokem síranu železnatého (20 ul) a 40 ul destilované vody. Poté byl přidán 1 mM roztok ferozinu (40 ul) a inkubován po dobu 10 minut při teplotě místnosti. Hodnoty absorbance vzorku (As) a kontroly (Ac) byly zaznamenány při 562 nm. Jako standard byla použita EDTA. Aktivita FIC jako procento chelace byla vypočtena pomocí rovnice (4).

2.9. Stanovení antioxidační síly železa (FRAP). FRAP byl stanoven podle metody popsané Benzinem a Szetem [24] s některými modifikacemi. Činidlo FRAP bylo připraveno smícháním 300mM acetátového pufru (pH 3,6), 20mM chloridu železitého a 10mM TPTZ v poměru 10:1:1 a inkubací při 37 °C po dobu 10 minut. Extrakt z prstového prosa (20 ul) byl smíchán s 30 ul acetátového pufru a 150 ul čerstvě připraveného činidla FRAP, inkubován při teplotě místnosti po dobu 8 minut a absorbance byla zaznamenána při 600nm. Pro vynesení standardní křivky byl použit Trolox（y=0,17x plus 0,15;产=1,00） a FRAP vypočítal jako ekvivalenty mg Trolox na 100 g mouky na bázi suché hmotnosti.

2.10. Stanovení inhibiční aktivity A5-LOX. Inhibiční aktivita {{0}}LOX byla hodnocena podle metody popsané Tappelem [25] s určitými modifikacemi. Extrakt z prstového prosa (10ul) byl smíchán se 115ul 100mM pufru fosforečnanu sodného (pH 8,0) a 50ul roztoku A5-LOX (5000U/ml) a inkubován při teplotě místnosti po dobu 10 minut. Reakce byla zahájena přidáním 25 ul 0,08 mM kyseliny linolové. Změna absorbance byla zaznamenávána při 234 nm v 1 minutových intervalech po dobu 10 minut při teplotě místnosti a byly zaznamenány hodnoty maximální rychlosti (Vmxk) vzorku (Vmaxs) a kontroly (Vmaxc). Jako standard byl použit baicalein. 5-LOX inhibiční aktivita jako procento věkové inhibice byla vypočtena pomocí rovnice (5). Hodnota ICs byla vypočtena pomocí grafů dávka-odpověď.

2.11. Stanovení inhibiční aktivity XO. XO inhibiční aktivita byla stanovena podle metody popsané v Lee et al. [26] s některými úpravami. Extrakt z prosa prstového (10ul) byl smíchán s 150ul 50 mM pufru fosforečnanu sodného (pH 7,4) a 20 ul XO (0,15U/ml) a inkubován po dobu 10 minut při teplotě místnosti. Reakce byla zahájena přidáním 20 ul 0,1 mM xanthinu. Změna absorbance byla zaznamenávána při 295 nm v min intervalech po dobu 15 min při teplotě místnosti a byly zaznamenány hodnoty Vmax vzorku (Vmaxs) a kontroly (Vmaxc). Jako standard byl použit allopurinol. Inhibiční aktivita XO jako procento inhibice byla vypočtena pomocí rovnice (6). Hodnota ICs byla vypočtena pomocí grafů dávka-odpověď.

2.12. Stanovení inhibiční aktivity hyaluronidázy. Hyaluronidázová inhibiční aktivita byla hodnocena podle metody popsané Sahasrabudhe a Dedhar [27] s určitými modifikacemi. Extrakt z prstového prosa (50ul) byl smíchán s 10ul hyaluronidázy （8400U/ml） a inkubován při 37 stupních po dobu 10 minut. Enzym byl aktivován přidáním 20 ul chloridu vápenatého (12,5 mM) a inkubací při 37 stupních po dobu 10 minut. Reakce byla zahájena přidáním hyaluronátu sodného (50 ul) a inkubována při 37 °C po dobu 40 minut. Poté bylo přidáno 10 ul 0,9 M hydroxidu sodného a 20 ul 0,2 M boritanu sodného a inkubováno při 100 stupních po dobu 3 minut. Po ochlazení na teplotu místnosti bylo přidáno 50 ul 67 mM p-dimethylaminobenzaldehydu a směs byla inkubována při 37 stupních po dobu 10 minut. Hodnoty absorbance vzorku (As) a kontroly (Ac) byly měřeny při 585 nm. Jako standard byla použita kyselina tříslová. Hyaluronidázová inhibiční aktivita jako procento inhibice byla vypočtena pomocí rovnice (7).

2.13. Stanovení inhibičních aktivit oxidativního vzplanutí. Protizánětlivé potenciály ve smyslu inhibičních aktivit oxidativního vzplanutí v plné lidské krvi a izolovaných polymorfonukleárních neutrofilech byly stanoveny pomocí luminolem zesíleného chemiluminiscenčního testu [28, 29] s určitými modifikacemi. Experimenty byly prováděny v Centru pro molekulární medicínu a výzkum léčiv Dr. Panjwaniho, Mezinárodní centrum pro chemické a biologické vědy, Univerzita v Karáčí, Pákistán, a institut má etické povolení pro studie o lidské krvi od nezávislé etické komise ICCBS, Spojené království. . Číslo: ICCB-S/IEC-008-BC-2015/Protocol/1.0.

2.13.1. Stanovení inhibiční aktivity oxidativního vzplanutí v celé lidské krvi. Lidská krev (1 ml) byla asepticky odebrána punkcí žíly do heparinizované zkumavky od zdravého nekuřáckého dobrovolníka, který neužíval žádné léky ani doplňky po dobu delší než jeden týden, a zředěna (ředění 1:20) HBS plus *(Hanks Balanced Solný roztok, obsahující vápník a hořčík). Extrakt z prosa prstového (25 ul) byl smíchán s naředěnou plnou krví (25 ul) a inkubován při 37 °C po dobu 15 minut. Poté bylo přidáno 25 ul séra opsonizovaného zymosanu a 25 ul luminolu. Produkce oxidativního vzplanutí ROS byla monitorována po dobu 50 minut pomocí luminometru s opakovanými skeny ve 30s intervalech a 1 s časem měření bodů. Jako standardní lék byl použit ibuprofen. Procento inhibice bylo vypočteno pomocí rovnice (8).

kde RLU je údaj luminometru ve smyslu relativních světelných jednotek (RLU) pro kontrolu a RLU je údaj luminometru v RLU pro vzorek. Hodnota ICs byla vypočtena pomocí grafů dávka-odpověď.

2.13.2. Stanovení inhibiční aktivity oxidativního vzplanutí u izolovaných polymorfonukleárních neutrofilů. Plná lidská krev (10 ml) byla smíchána se stejnými objemy HBSS (Hanksův vyvážený solný roztok, bez vápníku a hořčíku) a lymfocytovým separačním médiem (LSM) a erytrocyty byly ponechány usadit se po dobu 30 minut při teplotě místnosti. Poté byla plazma opatrně položena na LSM a centrifugována při 400 x g po dobu 20 minut při teplotě místnosti. Supernatant byl odstraněn; červené krvinky ve výsledné peletě byly lyžovány smícháním se studenou deionizovanou vodou, smíchány se studeným HBSS7 a centrifugovány při 300 x g po dobu 10 minut při 4 stupních. Peleta byla dvakrát promyta a životaschopnost výsledných polymorfonukleárních neutrofilů byla zkontrolována za použití vylučovací metody trypanové modři. Koncentrace buněk byla upravena na 1 x 10 stupňů buněk/ml. Izolované polymorfonukleární neutrofily (25 µl) byly smíchány s extraktem z prstového prosa (25 ul) a inkubovány po dobu 15 minut při 37 stupních. Poté bylo přidáno 25 ul sérového opsonizovaného zymosanu a 25 ul luminolu a produkce oxidativního vzplanutí ROS byla monitorována po dobu 50 minut pomocí luminometru s opakovanými skeny ve 30s intervalech a čase měření ls bodů. Jako standardní lék byl použit ibuprofen. Procento inhibice bylo vypočteno pomocí rovnice (8).

2.14. Statistická analýza. Data každého experimentu byla statisticky analyzována pomocí softwaru IBM SPSS Statistics (verze 20) a výsledky byly vyjádřeny jako průměr ± standardní chyba (SE). Statistická významnost byla nastavena na 95procentní hladině spolehlivosti. K určení rozdílů mezi odrůdami a extrakty byla použita jednocestná analýza rozptylu (ANOVA) a Tukeyův test. Pro korelační analýzu byl použit Pearsonův korelační koeficient.

Klasifikace zánětů

Akutní zánět: charakterizovaný především zarudnutím, otokem, bolestí atd., tj. zánětem, který se skládá převážně z reakce cévního systému.

Chronické záněty: především některá chronická zánětlivá onemocnění, jako je chronická gastroenteritida, chronická hepatitida, opakované gynekologické záněty a další onemocnění.

Příčina zánětu

Jakýkoli faktor, který může způsobit poškození tkáně, může být příčinou zánětu, to znamená, že zánětlivé faktory lze seskupit do následujících kategorií:

(1) Biologické faktory

Bakterie, viry, mykoplazmata, houby, spirochety a paraziti jsou nejčastějšími původci zánětu. Zánět způsobený biologickými patogeny se také nazývá infekce. Exotoxiny a endotoxiny produkované bakteriemi mohou přímo poškozovat tkáně; virová replikace v infikovaných buňkách vede k buněčné nekróze; některé antigenní patogeny poškozují tkáně prostřednictvím indukovaných imunitních reakcí po infekci, jako jsou parazitární infekce a tuberkulóza.

2) Fyzikální faktory

Vysoká teplota, nízká teplota, radioaktivní látky, ultrafialové paprsky atd. a mechanické poškození.

(3) Chemické faktory

Exogenní chemikálie, jako jsou silné kyseliny, silné zásady a terpentýn. Za určitých patologických stavů se v těle nahromadily endogenní toxické látky, jako jsou produkty rozkladu nekrotické tkáně a metabolity, jako je močovina.

(4) Cizí těleso

Cizí tělesa vstupující do lidského těla různými způsoby, jako jsou různé kovy, dřevěné úlomky, prach ve vzduchu, chirurgické stehy atd., mohou způsobit různé stupně zánětlivých reakcí v důsledku své různé antigenicity.

(5) Nekrotická tkáň

Příčiny, jako je ischemie nebo hypoxie, mohou způsobit nekrózu tkáně, což je potenciální zánětlivý faktor. Městnavé hemoragické pruhy a infiltrace zánětlivých buněk na okrajích čerstvých infarktů jsou oba projevy zánětu.

(6) Alergie

Když je imunitní odpověď těla abnormální, může to způsobit nepřiměřenou nebo nadměrnou imunitní odpověď, která způsobí poškození tkání a buněk a vede k zánětu. Jako je alergická rýma, kolitida, kopřivka, tuberkulóza, glomerulonefritida a další onemocnění.

Antibiotika jsou baktericidní a protizánětlivá, dlouhodobé užívání zničí normální flóru lidského těla, zahubí dobré bakterie, způsobí nerovnováhu střevní flóry, způsobí různé střevní dysfunkce a nežádoucí reakce a způsobí sekundární infekci, zredukuje organismus. odpor. Navíc antibiotika jsou většinou metabolizována játry a ledvinami a zneužívání antibiotik s největší pravděpodobností způsobí poškození jater a ledvin. Na pokynech všech protizánětlivých léků můžete věnovat pozornost slovům „používat opatrně u pacientů se špatnou funkcí jater a ledvin“. Kromě toho mohou antibiotika také zvýšit alergické reakce na léky. Vysoký výskyt alergické rýmy a alergického astmatu v posledních letech souvisí se zneužíváním antibiotik.

Pokusy ukázaly, že extrakt z Cistanche pipiensis bohatý na echinakosid má dobrý zlepšující účinek na kolitidu; Cystanche glykosid K a piposid B mají dobrý inhibiční účinek na sekreci oxidu dusnatého v buňkách, což ukazuje, že má dobrý protizánětlivý účinek.Cistancheje čínský léčivý materiál stejného původu jako léky a potraviny. Je to jeden z deseti nejlepších čínských bylinných léků v mé zemi. Je to poklad z hlubin pouště a přírodní tonikum. Cistanche Cistanche má lékařskou historii téměř 2,000 let. Poprvé byl zaznamenán v „Shen Nong's Materia Medica“. V roce 2005 byl Cistanche zařazen do „Pharmacopoeia Čínské lidové republiky“ jako pravý léčivý materiál. Cistanche je dobré tonikum již od starověku, bez jakýchkoliv záznamů toxicity, což plně dokazuje jeho bezpečnost.