Aplikace kvercetinu pro kapra obecného (Cyprinus Carpio): I. Účinky na výkonnost růstu, humorální imunitu, antioxidační stav, geny související s imunitou a odolnost proti tepelnému stresu

Tato studie byla provedena za účelem vyhodnocení účinku různých hladin kvercetinu na růstovou výkonnost, imunitní reakce, antioxidační stav, sérové ​​biochemické faktory a reakce na vysokoteplotní stres u kapra obecného (Cyprinus carpio). Celkový počet 216 kaprů o průměrné hmotnosti 27:21 ± 53 g bylo rozděleno do 12 nádrží (čtyři ošetření × tři opakování) a krmeno 0 mg/kg kvercetinu (T0), 200 mg/kg kvercetinu (T1), 400 mg/kg kvercetinu (T2) a 600 mg/kg kvercetinu (T3) po dobu 60 dnů. Byly významné rozdíly v růstové výkonnosti a nejvyšší konečná tělesná hmotnost (FBW), hmotnostní přírůstek (WG), specifická rychlost růstu (SGR) a příjem krmiva (FI) byly pozorovány v T2 a T3 (P < 0:05). .

Mezi sérovými biochemickými faktory a imunitou existuje úzký vztah. Sérové ​​biochemické faktory jsou hlavními metabolity v lidském těle a zvýšení nebo snížení jejich hladiny ovlivní imunitu lidského těla.

Sérové ​​biochemické faktory zahrnují bílkoviny, sacharidy, tuky a další látky, které tvoří složitou metabolickou síť v lidském těle. Když je lidské tělo ve zdravém stavu, hladiny sérových biochemických faktorů budou v rovnovážném stavu, což pomáhá udržovat zdravý stav lidského těla.

Když lidské tělo trpí nemocí nebo stresem, změní se hladiny biochemických faktorů v séru, což sníží imunitu. Například při poklesu hladiny proteinu a amylázy v séru dojde k výraznému oslabení imunity organismu, což má za následek zvýšenou náchylnost k nemocem.

Proto je velmi důležité udržovat rovnováhu sérových biochemických faktorů, čehož lze dosáhnout změnou životního stylu. Například, více cvičit, jíst méně tučných, slaných a cukrů a jíst více čerstvého ovoce a zeleniny může tělu pomoci udržet zdravé hladiny sérových biochemických faktorů, a tím zlepšit imunitu.

Stručně řečeno, sérové ​​biochemické faktory úzce souvisejí s lidskou imunitou a společně tvoří metabolickou síť těla. Měli bychom udržovat zdravý životní styl a udržovat sérové ​​biochemické faktory v rovnováze, abychom chránili své zdraví. Z tohoto pohledu musíme zlepšit imunitu. Cistanche dokáže výrazně zlepšit imunitu, protože Cistanche má také antivirové a protirakovinné účinky, které mohou posílit schopnost imunitního systému bojovat a zlepšit obranyschopnost organismu.

Klikněte na zdravotní přínosy cistanche

Různé hladiny kvercetinu významně zvýšily aktivitu dráhy komplementu (ACH50) a aktivitu lysozymu před i po tepelném stresu (P < 0:05). Kataláza (CAT), glutathionperoxidáza (GPx) a malondialdehyd (MDA) byly významně zvýšeny u ryb vystavených tepelnému stresu, ale ryby krmené doplňkovou stravou s kvercetinem vykazovaly nejnižší hladiny před i po tepelném stresu (P < {{ 7}}:05). Hladiny superoxiddismutázy (SOD) byly signifikantně zvýšeny v rybím krmivu doplněném kvercetinem v obou fázích (P < 0:05). Různé hladiny kvercetinu vedly k významnému poklesu alaninaminotransferázy (ALT) a aspartátaminotransferázy (AST) před a po náročném testu (P < 0:05).

Hladiny glukózy a kortizolu byly významně vyšší v kontrolní skupině ve srovnání s ostatními léčbami v obou fázích (P < {{0}}:05). Exprese glutathionperoxidázy (GPx) a lysozymu byla výrazně upregulována u ryb krmených dietou s přídavkem kvercetinu (P < 0:05). U růstového hormonu (GR) a interleukinu-8 (IL8) (P > 0:05) nebyly pozorovány žádné výrazné účinky. Závěrem lze říci, že doplňky stravy s kvercetinem (400- 600 mg/kg kvercetinu) zlepšily růstový výkon, imunitu a antioxidační stav a zvýšily toleranci vůči tepelnému stresu.

1. Úvod

Akvakultura se postupně rozvíjí souběžně s růstem celosvětové populace. Intenzivní produkční aktivity, náhlé teplotní změny, abnormální klima a další environmentální podmínky jako takové však způsobují stres rybám a omezují kvalitu produkce a výnos tím, že spouští imunitní depresi a zvyšují infekční epidemie. Jednou z nejdůležitějších environmentálních položek v průmyslu akvakultury je teplota, protože může ovlivnit metabolismus, potravní chování, růstovou výkonnost, přežití a odolnost vodních živočichů vůči chorobám [1–3]. Změny teploty snižovaly růst, účinnost krmiva, fyziologické funkce, imunitní odpověď a oxidační stav v orgánech vodních živočichů ([3–5].

V boji proti těmto problémům je zapojení funkčních přísad do krmiva pro ryby šetrné k životnímu prostředí a účinné. Tyto přísady mohou potenciálně zvýšit růst a reprodukční výkonnost ryb, kvalitu filé a odolnost vůči chorobám a podmínkám prostředí.

Polyfenoly a aditiva bohatá na polyfenoly se přidávají do krmiva pro vodní živočichy za účelem zvýšení výkonnosti růstu, imunitní reakce, antioxidačního stavu a odolnosti vůči chorobám [6, 7]. Kvercetin, který je považován za hlavní třídu flavonoidů (flavonolů), rodiny polyfenolických sloučenin, se hojně vyskytuje v mnoha druzích ovoce a zeleniny, včetně čaje, cibule, jablek, jahod, zelí, ořechů a květáku.

Je široce uznáváno, že kvercetin inhibuje produkci biofilmu mnoha patogenních bakterií, jako jsou Enterococcus faecalis, Staphylococcus aureus, mutanti Streptococcus, Escherichia coli a Pseudomonas aeruginosa svými vlastnostmi, jako je suprese quorum-sensing drah, inhibice efluxních pump, plazmatické membrány a blokování syntézy nukleových kyselin [8]. Kromě toho má kvercetin mnoho prospěšných vlastností, jako je protirakovinný [9], antioxidant a protizánětlivý [10].

Předchozí zjištění naznačovala, že dietní kvercetin měl pozitivní vliv na antioxidační stav [11, 12], růstovou výkonnost [13, 14], kvalitu masa [15], hematologické a imunitní parametry [16], odolnost vůči chorobám [17, 18], a obranné vlastnosti kanicového iridoviru [19–21]. Některé výzkumy ukázaly, že dietní quercetin zvýšil růstovou výkonnost kuřete [22] a zvýšil senzorické skóre, jako je barva, textura a celková přijatelnost kozího hřbetu [23]. U vodních živočichů zlepšil kvercetin v dávce nad 400 mg/kg růstovou výkonnost tilapie (Oreochromis spp.) [24].

Předchozí studie uvádějí, že dietní doplňky stravy snižují stresové markery u některých druhů ryb a/nebo měkkýšů, jako je Macrobrachium rosenbergii [25], Megalobrama amblycephala [26] a Oncorhynchus mykiss [27] vystavených vysokým teplotám. Nejsou však dostupné žádné informace o účinku kvercetinu v potravě na vodní živočichy vystavené vysokoteplotnímu stresu. Proto byla tato studie provedena s cílem porovnat účinek doplňků stravy s kvercetinem na růstovou výkonnost, některé imunitní parametry, antioxidační stav, některé biochemické proměnné v séru a reakce na vysokoteplotní stres u ryb.

2. Materiál a metody

2.1. Experimental Diets. Four experimental diets with different quercetin (>Byly formulovány úrovně 95procentní čistoty, Sigma Chemical Co., USA) (tabulka 1). Stručně řečeno, suché přísady byly důkladně promíchány. Poté, co byly kapalné složky difundovány do směsi, byla přidána deionizovaná voda (250 ml na kg stravy). Připravená směs byla extrudována v elektrickém mlýnku na maso (MG1400R, Pars Khazar, Teherán, Írán) a krmivo bylo vydáváno na základě velikosti rybí tlamy (průměr 1 mm). Nakonec byly připraveny čtyři experimentální diety zahrnující 0 mg/kg kvercetinu (T0), 200 mg/kg kvercetinu (T1), 400 mg/kg kvercetinu (T2) a 600 mg/kg kvercetinu (T3). Pelety byly vysušeny v sušicí skříni a poté skladovány při 4 °C až do použití. Chemické složení, vlhkost, obsah hrubého proteinu, lipidů a popela byly potvrzeny následujícími standardními metodami [28].

2.2. Ryby a experimentální podmínky. Celkový počet 216 kusů kaprů o průměrné hmotnosti 27:21 ± 53 g bylo získáno ze soukromé rybí farmy a přemístěno do výzkumné haly univerzity v Gonbadu (Gonbad, Írán). Byly skladovány ve 12 nádržích s hustotou 18 ryb na nádrž a aklimatizovány na experimentální podmínky po dobu 10 dne. V období aklimatizace byl kapr krmen základní stravou dvakrát denně. Na konci adaptačního času byly tyto nádrže náhodně nominovány do 4 ošetření se 3 replikáty a ryby byly krmeny rychlostí 2,5 procenta tělesné hmotnosti dvakrát denně po dobu 60 dnů. Rybí odpad a polovina akvarijní vody byly denně odsávány a nahrazeny dobře provzdušněnou vodou. Parametry kvality vody, jako je teplota, rozpuštěný kyslík a pH, byly pravidelně měřeny a udržovány na standardních úrovních pro kapra obecného (teplota 24:1±0}:5C, rozpuštěný kyslík 6:8±0:2mg/l, pH7 :36 ± 0:1 a fotoperioda 12D: 12L) [29].

2.3. Biometrie a odběr vzorků krve. Po 24 hodinách hladovění byly všechny ryby v každé nádrži anestetizovány pomocí 200 mg l-1 hřebíčkového prášku a byla zaznamenána hmotnost každé ryby [30]. Růstový výkon a míra přežití byly vypočteny pomocí běžného vzorce [7]. Pro odběr vzorku krve byly náhodně vybrány tři ryby na nádrž (9 ryb na ošetření). Vzorky krve byly odebrány z kaudální žíly každé ryby pomocí sterilní injekční stříkačky a zavedeny do zkumavek. Zkumavky byly centrifugovány (5000 ot./min po dobu 10 minut při 4 °C) [29] a poté byl supernatant oddělen a skladován při -20 °C.

2.4. Tepelná výzva. Po 60 dnech krmení byla podána výzva tepelnému stresu podle Dawood et al. [30] studie v triplikátech. Nejprve bylo během testu zastaveno krmení a sedm vyhladovělých ryb na nádrž (21 ryb na ošetření) bylo drženo v podobných podmínkách s vysokou teplotou (32 °C) po dobu 48 hodin kvůli tepelnému stresu. Ke zvýšení teploty až na 32 stupňů C byly použity akváriové ohřívače a teplota vody byla často kontrolována přenosnými multiparametrovými měřidly (YSI, Čína).

2.5. Odběr vzorků krve a tkání. Po náročném testu byly všechny ryby v každé nádrži anestetizovány pomocí 200 mg l-1 hřebíčkového prášku a tři ryby na nádrž (9 ryb na ošetření) byly vybrány pro odběr vzorků krve. Vzorky krve byly odebrány z kaudální žíly každé ryby pomocí sterilní injekční stříkačky a zavedeny do zkumavek. Zkumavky byly odstředěny (5000 ot./min po dobu 10 minut při 4 °C) [29] a poté byl supernatant oddělen a skladován při -20 °C.

2.6. Biochemický test. Před a po náročných testech byly glukóza, alaninaminotransferáza (ALT), aspartátaminotransferáza (AST), kataláza (CAT), glutathionperoxidáza (GPx), malondialdehyd (MDA) a superoxiddismutáza (SOD) testovány pomocí komerčních souprav (Pars Azmoon , Írán). Aktivita sérového lysozymu byla testována pomocí metody Saurabha a Sahoo [31] s turbidimetrem. Nejprve byla připravena suspenze Micrococcus lysodeikticus rozpuštěním 0,2 mg ml-1 v 0.05 M pufru fosforečnanu sodného (pH 6,2). Poté bylo 50 ul séra přidáno do 2 ml suspenze Micrococcus lysodeikticus a reakční směs byla rozdělena do 96-jamkové mikrotitrační destičky (Hyperion, Německo) a okamžitě byla spektrofotometricky změřena počáteční OD při 450 nm. Konečná OD byla měřena po inkubaci reakční směsi při 24 °C po dobu 1 hodiny. Jednotka lysozymové aktivity byla definována jako množství vzorku způsobující pokles absorbance o 0,001/min lysozymu vzorku kalibrovaného pomocí standardní křivky stanovené s lysozymem z bílku slepičích vajec (Sigma) v PBS. Aktivita sérového alternativního komplementu (ACH50) byla měřena na základě Yano et al. [32], ve kterém byly jako cíl použity králičí červené krvinky (RBC). Hladiny sérového kortizolu byly měřeny kompetitivní metodou ELISA za použití komerční soupravy (IBL Co., Gesellschaft für Immunchemie und Immunbiologie).

2.7. Genová exprese. Celková RNA z rybích jater odebraná po náročném testu byla izolována pomocí GeneAll Kit (GeneAll Biotechnology, Soul, Korea). Po vyhodnocení kvality RNA elektroforézou na agarózových gelech byly 2 ug celkové RNA ošetřeny DNázou I a použity pro syntézu prvního vlákna cDNA pomocí oligo (dT) primerů, 10 mM dNTP a reverzní transkriptázy podle výrobce. návod (Thermo Scientific, Německo). Genově specifické primery byly uvedeny pro analýzu RT-PCR v tabulce 2. Gen beta-aktinu byl použit jako vnitřní kontrola. qPCR byla provedena pomocí RealQ Plus Master Mix Green (AMPLIQONIII) podle pokynů výrobce. Reakce sestávající z 10 ul zelené směsi SYBR, 1 ul zředěné cDNA, 0,5 ul každého primeru a vody Millipore byla přidána na konečný objem 20 ul. Pro reakci byl použit následující program: 10 min při 95 °C, denaturace při 95 °C po dobu 10 s, žíhání při 60 °C po dobu 40 s a extenze při 72 °C po dobu 35 s po 40 cyklů. Hladina RNA byla vypočtena na základě metody 2-ΔΔCT [33]. Pro každý experiment byla provedena tři biologická opakování.

2.8. Statistická analýza. Data (průměr ± SD) byla analyzována jednocestnou analýzou rozptylu (ANOVA) následovanou Duncanovým testem s více rozsahy pro porovnání průměrů mezi skupinami. Před analýzami byla data hodnocena na normalitu a homogenitu rozptylu Shapiro-Wilkovým testem a Leveneovým testem. Dvoucestná ANOVA byla také použita k testování účinků stravy, tepelného stresu a jejich interakcí. Statistické analýzy byly provedeny pomocí softwaru SPSS verze 23 a P < 0:05 byla akceptovaná hladina významnosti.

3. Výsledky

3.1. Výkonnost růstu. Byly zde významné rozdíly v růstové výkonnosti a nejvyšší FBW, WG, SGR a FI byly pozorovány v T2 a T3 (tabulka 3, P < 0:05). FCR byl významně snížen u kvercetinu krmeného rybami (tabulka 3, P< 0:05).

3.2. Sérová imunitní odpověď. Aktivita lysozymu a ACH50 byla výrazně snížena, když byli kapři vystaveni tepelnému stresu, a nejnižší aktivita byla pozorována u ryb krmených kontrolní stravou a ryb krmených doplňkovou stravou, což představuje nejvyšší úrovně (tabulka 4, P < 0:05). Před a po tepelném stresu různé hladiny kvercetinu významně zvýšily aktivitu ACH50 a lysozymu a nejvyšší aktivity byly pozorovány u ryb krmených 400 (T2) a 600 (T3) mg/kg kvercetinu (tabulka 4, P < 0:05).

3.3. Antioxidační enzymy. Kataláza, MDA a GPx byly významně zvýšeny u ryb vystavených tepelnému stresu, přičemž nejvyšší hladina u ryb krmených kontrolní stravou a ryb krmených doplňkovou stravou s kvercetinem vykazovala nejnižší hladiny (tabulka 4, P < {{3} }:05). Hladiny SOD se významně snížily u ryb vystavených tepelnému stresu (když byla všechna ošetření kombinována); také byl významný rozdíl v hladinách SOD mezi ošetřeními před a po tepelné expozici a nejvyšší hladina byla zaznamenána v T2 v obou fázích (tabulka 5, P < 0:05).

3.4. Stresové parametry. Před a po tepelném stresu byly hladiny glukózy a kortizolu významně vyšší v kontrolní skupině ve srovnání s léčbou doplněnou kvercetinem (tabulka 6, P < 0:05). Vystavení kapra obecného vysokým teplotám vedlo k významnému zvýšení AST a ALT při všech ošetřeních, ale ryby krmené 600 mg/kg kvercetinu měly nejnižší hladiny (tabulka 6, P < 0:05). Navíc před a po čelenži byly nejvyšší a nejnižší aktivity ALT a AST pozorovány v kontrolní skupině a T3, v daném pořadí (tabulka 6, P < 0:05).

3.5. Genová exprese. Po vystavení tepelnému stresu byla exprese GPx (obrázek 1(a)) výrazně zvýšena a nejvyšší hladiny RNA byly pozorovány u ryb krmených 400 mg/kg kvercetinu (P < 0: 05). Žádné výrazné účinky nebyly pozorovány u GR (obrázek 1(b)) a IL8 (obrázek 1(c)), ale byly vyšší u ryb krmených krmivem s přídavkem kvercetinu (P > 0:05).

Exprese genu pro lysozym byla výrazně vyšší u kapra obecného krmeného krmivem doplněným kvercetinem než v kontrolní skupině (obrázek 1(d)).

4. Diskuze

V této studii začlenění kvercetinu do stravy významně zlepšilo růst a účinnost krmiva u kapra obecného. V souladu s tím byly nejlepší WG, SGR, FI a FCR získány u ryb krmených 400 a 600 mg/kg stravy doplněné kvercetinem. Předchozí zjištění naznačovala, že dietní kvercetin měl pozitivní vliv na WG, SGR a FCR u tilapie nilské (Oreochromis niloticus) [34], amuru (Ctenopharyngodon idella) () a kapra obecného [13]. Podpůrný účinek kvercetinu na růstovou výkonnost ryb může souviset s jejich lepší účinností při stimulaci sekrece trávicích enzymů, jako je proteáza, amyláza a lipáza [13, 34], snížením množství škodlivých bakterií ve střevě a podporou populací prospěšné bakterie [35], zlepšují funkci střevní bariéry a zlepšují povrch střevních klků a pohárkových buněk [36].

Aktivita ACH50 je významným parametrem, který prospíval při hodnocení humorální nespecifické imunitní odpovědi u ryb. Pokles hladin ACH50 v séru je hlášen v různých stresových situacích, kterým jsou ryby vystaveny. V této studii se sérová aktivita ACH50 významně zvýšila ve skupině suplementované dávkami 400 a 600 mg/kg kvercetinu před stresem a po stresu ve srovnání s kontrolní skupinou. Závěrem, jelikož játra jsou hlavním zdrojem proteinů komplementu, zvýšení hladin ACH50 lze vysvětlit zlepšením zdraví a funkce jater. Naše výsledky, pokud jde o zvýšení aktivity ACH50, jsou v plném souladu se zjištěními dřívějších studií s běžnou stravou krmenou kapry s 200 nebo 800 mg/kg kvercetinu [16]. Kromě toho jsou výsledky v souladu s předchozími studiemi, které prokázaly, že exogenní aditiva do krmiva úspěšně brání snížení aktivity komplementu po stresu [37, 38].

Lysozym je důležitý antimikrobiální peptid vrozeného imunitního systému napadajícího patogeny. Významné snížení aktivity sérového lysozymu bylo zjištěno u kontrolní skupiny ryb vystavených 32 °C po dobu 48 hodin. Podobný pokles aktivity sérového lysozymu při vyšších teplotách byl pozorován u tilapie nilské, Oreochromis niloticus [39]. V této studii byla aktivita sérového lysozymu významně zvýšena ve všech skupinách suplementovaných kvercetinem před stresem a po stresu ve srovnání s kontrolní skupinou. To naznačuje, že suplementace kvercetinem inhibuje post-vysokoteplotní stresovou imunosupresi.

Souběžně s naší studií byly hladiny lysozymu také zvýšeny u některých druhů ryb krmených krmivy obsahujícími kvercetin. Například C. carpio krmený stravou obsahující 200 nebo 800 mg kg-1 kvercetinu vykázal zvýšení hladin lysozymu v séru, střevech a hlenu [16]. Wang a kol. [18] přidali 0,01, 0,1, 1, 10, 100 a 1000 ug/l kvercetinu do chovné vody zebřičky (Danio rerio) a uvedli, že aktivita sérového lysozymu byla významně vyšší ve skupině s 1 ug/l kvercetinu než ve skupině kontrolní skupina.

Je dobře známo, že glukóza v séru se používá jako nespecifický stresový index ve studiích na rybách [40, 41]. V této studii suplementace kvercetinem významně snížily obsah glukózy v séru ve skupině před stresem. K dispozici jsou některé zprávy o hypoglykemických účincích kvercetinu [42, 43]. To bylo podpořeno nedávnou studií, kde kvercetin snižuje hladinu glukózy v séru u kapra obecného [16]. Na rozdíl od naší studie však hladiny glukózy v séru u sumce stříbrného, ​​Rhamdia queen [12] a cejna tupého, Megalobrama amblycephala [44], krmených krmivem obsahujícím kvercetin, zůstaly nezměněny.

Superoxiddismutáza (SOD), kataláza (CAT) a glutathionperoxidáza (GPx) jsou hlavními enzymy, které vychytávají reaktivní formy kyslíku (ROS) a detoxikují H2O2 a hydroperoxidy. Kromě toho se malondialdehyd (MDA) často používá jako biomarker peroxidace lipidů. Naše výsledky, pokud jde o zvýšení SOD a snížení aktivity MDA, jsou v plném souladu se zjištěními dřívějších studií u kapra obecného, ​​C. carpio, krmených stravou obsahující 800 mg/kg kvercetinu. Podobně Ibrahim a kol. [45] uvádějí zvýšený SOD a GPx a snížený MDA účinek kvercetinu u nilské tilapie, Oreochromis niloticus.

Navíc exprese SOD mRNA [46] a hladiny SOD a CAT aktivity mozku, žáber, jater a/nebo svalů [12] byly vyšší u ryb krmených quercetinem. Parametry SOD, CAT, MDA a GPx hrají významnou roli v antioxidační reakci v různých stresových podmínkách, jako jsou pesticidy [47], kovy [48], vysoké teploty [49, 50], hypoxie [50] a nízké teploty [51]. Není však k dispozici žádná studie o účincích kvercetinu na antioxidační kapacitu ryb v podmínkách vysokoteplotního stresu. V této studii snížené hladiny CAT, MDA a GPx a zvýšené hladiny SOD pozorované v podmínkách post-vysokoteplotního stresu ukazují na významný antioxidační účinek kvercetinu. Podobně dietní antrachinonový extrakt, zvláště při 0.{12}},2% hladinách významně zvýšil SOD a snížil hladinu MDA v játrech u M. rosenbergii při vysokoteplotním stresu [25].

Aktivity sérových enzymů jsou akceptovány jako důležité indikátory poškození tkáně; například AST a ALT jsou indikátory poškození jater a laktátdehydrogenáza (LDH) pro poškození jater nebo svalů u ryb [52]. Zvýšení těchto enzymů v krvi lze proto připsat poškození jater a svalové tkáně. Předchozí studie ukázaly, že poskytované sérové ​​aktivity ALT a AST se snížily, když byly ryby krmeny kvercetinem [13, 16]. V literatuře dosud nebyla nalezena žádná studie o účincích kvercetinu při vysokoteplotním stresu na hladiny enzymů v rybím séru. Nicméně [25] uvedli, že aktivity AST a ALT u sladkovodních krevet (M. rosenbergii) krmených stravou obsahující antrachinonový extrakt z R. officinale Bail pod vysokoteplotním stresem byly významně nižší než u kontrolních ryb. V této studii se sérové ​​AST a ALT (kromě 200 mg/kg) snížily u ryb krmených krmivem doplněným kvercetinem před vysokoteplotním stresem. Tento trend se udržel i po vysokoteplotní zátěži.

Nízké hladiny glukózy v séru u ryb vystavených vysokým teplotám mohou být výsledkem podvyživených stavů, poruch jater a zánětu [25, 50, 53]. To může souviset se zvýšením spotřeby glukózy v periferních tkáních, pravděpodobně v souvislosti se zvýšením energetické potřeby generované stresovou reakcí [54]. Podobné snížení hladiny glukózy v séru při vyšší teplotě (21 °C) bylo pozorováno u pstruha duhového, Oncorhynchus mykiss [50]. Na rozdíl od našich zjištění však byly u cejna wuchangského, M. amblycephala, při vysokoteplotním stresu hlášeny zvýšené hladiny glukózy v krvi [26]. Tyto různé výsledky mohou souviset s rozdíly v podmínkách chovu, době expozice, druhu ryb, velikosti ryb a/nebo věku.

Krevní kortizol je jedním z nejdůležitějších ukazatelů reakce na tepelný stres u ryb [55]. V této studii byly hladiny kortizolu významně nižší u ryb krmených různými hladinami kvercetinu před tepelným stresem. Také ryby krmené stravou doplněnou kvercetinem vykazovaly po tepelném stresu významně nižší hladiny kortizolu, což zvýrazňovalo ochranný potenciál suplementace kvercetinem na metabolismus kapra obecného. Podobně nilská tilapie krmená dietním butyrátem sodným vykázala pokles hladiny kortizolu při vystavení tepelnému stresu [30]. V této studii byl kortizol významně nižší během tepelného stresu u kvercetinu krmeného rybami ve srovnání s kontrolní skupinou. Tyto výsledky mohou souviset s antistresovými účinky kvercetinu, který inhiboval doménu zvýšeného kortizolu.

V souladu s těmito zjištěními lze navrhnout, že kvercetin (400-600 mg/kg) může být užitečnou látkou při léčbě a ochraně buněk před možným oxidačním stresem.

Dostupnost dat

Soubory dat vytvořené během a/nebo analyzované během aktuální studie jsou k dispozici od příslušných autorů na rozumné vyžádání.

Střet zájmů

Autoři prohlašují, že nejsou ve střetu zájmů

Poděkování

Tato studie byla podpořena Univerzitou Zabol (Írán) s kódem grantu (IR-UOZ-GR-6313). Tato práce byla částečně podporována Chiang Mai University.

Reference

[1] F. Wu, C. Yang, H. Wen a kol., "Zlepšení tolerance tilapie při nízké teplotě, Oreochromis niloticus: funkční analýza Astragalus membranaceus," Journal of the World Aquaculture Society, sv. 50, č. 4, s. 749–762, 2019.

[2] ME Abd El-Hack, SA Abdelnour, AE Taha a kol., "Byliny jako termoregulační látky u drůbeže: přehled," Science of the Total Environment, sv. 703, článek 134399, 2020.

[3] C. Liu, W. Shen, C. Hou et al., "Nízká teplota indukovaná variace v biochemických indexech plazmy a expresi genu pro aquaglyceroporin u velkého žlutého croaker Larimichthys crocea," Scientific Reports, sv. 9, č. 1, s. 1–10, 2019.

[4] J. Qiang, H. Yang, H. Wang, P. Xu, Z. Qi a J. He, „Studie krevních biochemických indexů a exprese hepatické HSP70 mRNA různých kmenů tilapie uměle napadených streptokokem iniae, “ Journal of Fisheries of China, sv. 36, č. 6, s. 958–968, 2012.

[5] IS Vicente, LF Fleuri, PL Carvalho a kol., "Fragment pomerančové kůry zlepšuje antioxidační kapacitu a hematologický profil nilské tilapie vystavené stresu vyvolanému teplem/rozpuštěným kyslíkem," Aquaculture Research, sv. 50, č. 1, s. 80–92, 2019.

[6] E. Ahmadifar, M. Yousefi, M. Karimi a kol., "Přínosy dietních polyfenolů a aditiv bohatých na polyfenoly pro zdraví vodních živočichů: přehled," Reviews in Fisheries Science & Aquaculture, sv. 29, č. 4, s. 478–511, 2021.

[7] E. Ahmadifar, M. Eslami, N. Kalhor a kol., „Účinek stravy obohacené o propionát sodný na růstovou výkonnost, antioxidační vlastnosti, vrozenou adaptivní imunitní odpověď a expresi genů souvisejících s růstem u kriticky ohrožených jeseter beluga (Huso huso)," Fish & Shellfish Immunology, sv. 125, s. 101–108, 2022.

[8] H. Memariani, M. Memariani a A. Ghasemian, "Přehled anti-biofilmových vlastností kvercetinu proti bakteriálním patogenům," World Journal of Microbiology and Biotechnology, sv. 35, č. 9, 2019.

[9] SS Baghel, N. Shrivastava, RS Baghel, P. Agrawal a S. Rajput, "A review of quercetin: antioxidant and anticancer properties," World Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Sciences, sv. 1, č. 1, s. 146–160, 2012.

[10] M. Lesjak, I. Beara, N. Simin a kol., "Antioxidační a protizánětlivé aktivity kvercetinu a jeho derivátů," Journal of Functional Foods, sv. 40, s. 68–75, 2018.

[11] TS Pês, EM Saccol, É. P. Londero a kol., "Ochranný účinek kvercetinu proti oxidativnímu stresu vyvolanému oxytetracyklinem ve svalovině sumce stříbrného," Aquaculture, sv. 484, s. 120–125, 2018.

[12] TS Pês, EM Saccol, GM Ourique a kol., "Quercetin ve stravě sumce stříbrného: účinky na antioxidační stav, krevní parametry a expresi hormonů hypofýzy," Aquaculture, sv. 458, s. 100–106, 2016.

[13] H. Ghafarifarsani, SH Hoseinifar, S. Javahery, M. Yazici a H. Van Doan, „Výkon růstu, biochemické parametry a trávicí enzymy u kapra obecného (Cyprinus carpio) krmeného experimentální stravou doplněnou vitaminem C, tymiánem esenciální olej a kvercetin," Italian Journal of Animal Science, sv. 21, č. 1, s. 291–302, 2022.

[14] SW Zhai a SL Liu, "Účinky dietního kvercetinu na růstovou výkonnost, hladinu sérových lipidů a složení těla tilapie (Oreochromis niloticus)," Italian Journal of Animal Science, sv. 12, č. 4, článek e85, 2013.

[15] Z. Xu, X. Li, H. Yang, G. Liang, B. Gao a X. Leng, "Kvercetin ve stravě zlepšil růst, antioxidaci a kvalitu masa amura (Ctenopharyngodon idella)," Journal Světové společnosti pro akvakulturu, sv. 50, č. 6, s. 1182–1195, 2019.

For more information:1950477648nn@gmail.com