Příspěvky autora:SB a YEK koncipovaly a navrhovaly strukturu a obsah recenze. SB analyzovala data a napsala rukopis. EEM, MS, HB, NM, LK a YEK přispěly k psaní – recenzi a editaci. YEK dohlížel na projekt. Všichni autoři si přečetli publikovanou verzi rukopisu a souhlasí s ním.

Glykosid cistanche může také zvýšit aktivitu SOD v srdeční a jaterní tkáni a významně snížit obsah lipofuscinu a MDA v každé tkáni, účinně zachycovat různé reaktivní kyslíkové radikály (OH-, H₂O₂ atd.) a chránit před způsobeným poškozením DNA. OH-radikály. Cystanche fenylethanoidové glykosidy mají silnou schopnost vychytávání volných radikálů, vyšší redukční schopnost než vitamín C, zlepšují aktivitu SOD v suspenzi spermií, snižují obsah MDA a mají určitý ochranný účinek na funkci membrány spermií. Polysacharidy Cistanche mohou zvýšit aktivitu SOD a GSH-Px v erytrocytech a plicních tkáních experimentálně senescentních myší způsobených D-galaktózou, stejně jako snížit obsah MDA a kolagenu v plicích a plazmě a zvýšit obsah elastinu. dobrý čisticí účinek na DPPH, prodlužuje dobu hypoxie u senescentních myší, zlepšuje aktivitu SOD v séru a oddaluje fyziologickou degeneraci plic u experimentálně senescentních myší Experimenty prokázaly, že Cistanche má dobrou antioxidační schopnost s buněčnou morfologickou degenerací a má potenciál být lékem k prevenci a léčbě nemocí stárnutí kůže. Zároveň má echinakosid v Cistanche významnou schopnost vychytávat volné radikály DPPH a má schopnost vychytávat reaktivní formy kyslíku a bránit volnými radikály indukované degradaci kolagenu a má také dobrý reparační účinek na poškození aniontů volnými radikály thyminu.

Klikněte na Výhody tablet Cistanche

【Další informace:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:{0}}】

Financování:Tento výzkum byl financován nadací OCP Phosboucraâ Foundation, Laâyoune, Maroko, grant č. PR008.

Prohlášení institucionální revizní komise:Nelze použít.

Prohlášení o informovaném souhlasu:Nelze použít.

Prohlášení o dostupnosti dat:Sdílení dat se na tento článek nevztahuje, protože během této studie nebyly vytvořeny ani analyzovány žádné soubory dat.

Střet zájmů:Autoři prohlašují, že výzkum byl proveden bez jakýchkoli obchodních nebo finančních vztahů, které by mohly být vykládány jako potenciální střet zájmů.

Reference

1. Technologie rostlinných buněk – Váš partner v kultuře rostlinných tkání. Aplikace technologie rostlinných buněk v kosmetickém průmyslu. Dostupný online:

2. Výzkum přednosti. Velikost trhu rostlinných výtažků dosáhne do roku 2030 přibližně 22,49 miliard USD.

3. Výzkum přednosti. Velikost trhu rostlinných extraktů v hodnotě kolem 22,49 miliard USD do roku 2030.

4. Trehan, S.; Michniak-Kohn, B.; Beri, K. Rostlinné kmenové buňky v kosmetice: Současné trendy a budoucí směry. Budoucí Sci. OA 2017, 3, FSO226. [CrossRef] [PubMed]

5. Georgiev, V.; Slavov, A.; Vasileva, I.; Pavlov, A. Kultura rostlinných buněk jako vznikající technologie výroby aktivních kosmetických přísad. Ing. Life Sci. 2018, 18, 779–798. [CrossRef] [PubMed]

6. Espinosa-Leal, CA; Puente-Garza, CA; García-Lara, S. In vitro rostlinná tkáňová kultura: Prostředky pro produkci biologicky aktivních sloučenin. Planta 2018, 248, 1–18. [CrossRef] [PubMed]

7. Namdeo, AG; Ingawale, DK Ashwagandha: Pokroky v rostlinných biotechnologických přístupech pro propagaci a produkci bioaktivních sloučenin. J. Ethnopharmacol. 2021, 271, 113709. [CrossRef]

8. Parrado, C.; Mercado-Saenz, S.; Perez-Davo, A.; Gilaberte, Y.; Gonzalez, S.; Juarranz, A. Environmentální stresory na stárnutí kůže. Mechanické vhledy. Přední. Pharmacol. 2019, 10, 759. [CrossRef]

9. Pérez-S0. Yousef, H.; Alhajj, M.; Sharma, S. Anatomie, kůže (pokožka), epidermis; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. Shin, J.-W.; Kwon, S.-H.; Choi, J.-Y.; Na, J.-I.; Huh, C.-H.; Choi, H.-R.; Park, K.-C. Molekulární mechanismy dermálního stárnutí a přístupy proti stárnutí. Int. J. Mol. Sci. 2019, 20, 2126. [CrossRef]

12. Michalák, M.; Pierzak, M.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. Bioaktivní sloučeniny pro zdraví pokožky: Přehled. Živiny 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. Kobayashi, T.; Ricardo-Gonzalez, RR; Moro, K. Vrozené lymfoidní buňky – kožní vrozené strážce a regulátory. Trends Immunol. 2020, 41, 100–112. [CrossRef]

14. Nielsen, MM; Aryal, E.; Safari, E.; Mojsoška, ​​B.; Jenssen, H.; Prabhala, BK Současný stav transportérů SLC a ABC v kůži a jejich vztah k metabolitům potu a kožním onemocněním. Proteomy 2021, 9., 23. [CrossRef]

15. Wang, AS; Dreesen, O. Biomarkery buněčného stárnutí a stárnutí kůže. Přední. Genet. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. Bonté, F.; Girard, D.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. Změny kůže během stárnutí. In Biochemie a buněčná biologie stárnutí: část II klinická věda; Springer: Berlín/Heidelberg, Německo, 2019; Svazek 91, s. 249–280.

17. Rinnerthaler, M.; Bischof, J.; Streubel, MK; Trost, A.; Richter, K. Oxidační stres ve stárnoucí lidské kůži. Biomolekuly 2015, 5, 545–589. [CrossRef] [PubMed]

18. Zamarrón, A.; Lorrio, S.; González, S.; Juarranz, Á. Fernblock zabraňuje poškození kožních buněk způsobenému viditelným a infračerveným zářením. Int. J. Mol. Sci. 2018, 19, 2250. [CrossRef]

19. Kammeyer, A.; Luiten, R. Oxidační události a stárnutí kůže. Ageing Res. Rev. 2015, 21, 16–29. [CrossRef] [PubMed]

20. Christensen, L.; Suggs, A.; Baron, E. Ultrafialová fotobiologie v dermatologii. In Ultrafialové světlo v lidském zdraví, nemocech a životním prostředí; Springer: Berlín/Heidelberg, Německo, 2017; Svazek 996, s. 89–104.

21. Samtiya, M.; Aluko, RE; Dhewa, T.; Moreno-Rojas, JM Potenciální zdravotní přínosy bioaktivních složek rostlinných potravin: Přehled. Potraviny 2021, 10, 839. [CrossRef]

22. Bakrim, WB; Nurcahyanti, ADR; Dmirieh, M.; Mahdi, I.; Elgamal, AM; El Raey, MA; Wink, M.; Sobeh, M. Fytochemické profilování extraktu z listů Ximenia Americana Var. Caffra a její antioxidační, antibakteriální a antiagingové aktivity in vitro a Caenorhabditis Elegans: Kosmeceutický a dermatologický přístup. Oxid. Med. Buňka. Longev. 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Y.; Wu, Y.; Wang, M. Bioaktivní látky rostlinného původu 30. Handb. Food Chem. 2015, 967, 967–1008.

24. Abeyrathne, EDNS; Nam, K.; Huang, X.; Ahn, DU Struktura, účinnost, mechanismy a aplikace antioxidantů rostlinného a živočišného původu: Přehled. Antioxidanty 2022, 11, 1025. [CrossRef]

25. Smetanská, I. Udržitelná produkce polyfenolů a antioxidantů rostlinnými kulturami in vitro. In Bioprocessing of Plant In Vitro Systems; Springer: Berlín/Heidelberg, Německo, 2018; s. 225–269.

26. Namdeo, A. Elicitace rostlinných buněk pro produkci sekundárních metabolitů: Přehled. Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. Georgiev, MI; Weber, J.; Maciuk, A. Bioprocessing rostlinných buněčných kultur pro hromadnou produkci cílených sloučenin. Appl. Microbiol. Biotechnol. 2009, 83, 809–823. [CrossRef]

28. Wang, SY; Chen, C.-T.; Sciarappa, W.; Wang, CY; Camp, kvalita ovoce MJ, antioxidační kapacita a obsah flavonoidů v organicky a konvenčně pěstovaných borůvkách. J. Agric. Food Chem. 2008, 56, 5788–5794. [CrossRef] [PubMed]

29. Roberts, SC Výroba a inženýrství terpenoidů v kultuře rostlinných buněk. Nat. Chem. Biol. 2007, 3, 387–395. [CrossRef] [PubMed]

30. Coyago-Cruz, E.; Corell, M.; Stinco, CM; Hernanz, D.; Moriana, A.; Meléndez-Martínez, AJ Vliv regulovaného deficitního zavlažování na parametry kvality, karotenoidy a fenoly různých odrůd rajčat (Solanum Lycopersicum L.). Food Res. Int. 2017, 96, 72–83. [CrossRef] [PubMed]

31. Alquezar, B.; Rodrigo, MJ; Láďo, J.; Zacarías, L. Srovnávací fyziologická a transkripční studie biosyntézy karotenoidů v bílém a červeném grapefruitu (Citrus Paradisi Macf.). Strom Genet. Genomes 2013, 9, 1257–1269. [CrossRef]

32. Khoo, KS; Lee, SY; Ooi, CW; Fu, X.; Miao, X.; Ling, TC; Show, PL Nedávné pokroky v biorafinerii astaxanthinu z Haematococcus Pluvialis. Bioresour. Technol. 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. Igreja, WS; Maia, FdA; Lopes, AS; Chisté, RC Biotechnologická výroba karotenoidů pomocí levných substrátů je ovlivněna parametry kultivace: Přehled. Int. J. Mol. Sci. 2021, 22, 8819. [CrossRef] [PubMed]

34. Quideau, S.; Deffieux, D.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. Rostlinné polyfenoly: Chemické vlastnosti, biologické aktivity a syntéza. Angew. Chem. Int. Ed. 2011, 50, 586–621. [CrossRef]

35. Braga, A.; Ferreira, P.; Oliveira, J.; Rocha, I.; Faria, N. Heterologní produkce resveratrolu v bakteriálních hostitelích: současný stav a perspektivy. World J. Microbiol. Biotechnol. 2018, 34, 1–11. [CrossRef]

36. Beekwilder, J.; Wolswinkel, R.; Jonker, H.; Hall, R.; de Vos, ČR; Bovy, A. Produkce resveratrolu v rekombinantních mikroorganismech. Appl. Environ. Microbiol. 2006, 72, 5670–5672. [CrossRef]

37. Li, M.; Schneider, K.; Kristensen, M.; Borodina, I.; Nielsen, J. Technické kvasinky pro produkci stilbenoidních antioxidantů na vysoké úrovni. Sci. rep. 2016, 6, 1–8. [CrossRef]

38. Gašpar, P.; Dudník, A.; Neves, AR; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis pro výrobu Stilbene. In Sborník příspěvků z 28. mezinárodní konference o polyfenolech 2016, Vídeň, Rakousko, 11. července 2016; DTU Dánsko: Kongens Lyngby, Dánsko, 2016.

39. Kallscheuer, N.; Vogt, M.; Stenzel, A.; Gätgens, J.; Bott, M.; Marienhagen, J. Konstrukce platformového kmene Corynebacterium Glutamicum pro produkci stilbenů a (2S)-flavanonů. Metab. Ing. 2016, 38, 47–55. [CrossRef] [PubMed]

40. Tian, ​​B.; Liu, J. Resveratrol: Přehled rostlinných zdrojů, syntézy, stability, modifikace a aplikace potravin. J. Sci. Food Agric. 2020, 100, 1392–1404. [CrossRef] [PubMed]

41. Yang, Y.; Lin, Y.; Li, L.; Linhardt, RJ; Yan, Y. Regulating Malonyl-CoA Metabolism via Synthetic Antisense RNAs for Enhanced Biosynthesis of Natural Products. Metab. Ing. 2015, 29, 217–226. [CrossRef]

42. Miras-Moreno, B.; Pedreño, M.Á.; Romero, LA Bioaktivita a biologická dostupnost fytoenu a strategie pro zlepšení jeho produkce. Phytochem. Rev. 2019, 18, 359–376. [CrossRef]

43. Ramirez-Estrada, K.; Vidal-Limon, H.; Hidalgo, D.; Moyano, E.; Golenioswki, M.; Cusidó, RM; Palazon, J. Elicitation, efektivní strategie pro biotechnologickou produkci bioaktivních sloučenin s vysokou přidanou hodnotou v továrnách rostlinných buněk. Molekuly 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, O.; Bonfill, M.; Moyano, E.; Onrubia, M.; Mirjalili, M.; Cusido, R.; Palazon, J. Biotechnologická výroba taxolu a příbuzných taxoidů: současný stav a vyhlídky. Anti-Cancer Agents Med. Chem. Bývalý. Curr. Med. Chem.-Anti-Cancer Agents 2009, 9, 109–121. [CrossRef]

45. Matsubara, K.; Kitani, S.; Yoshioka, T.; Morimoto, T.; Fujita, Y.; Yamada, Y. Kultura buněk Coptis Japonica s vysokou hustotou zvyšuje produkci berberinu. J. Chem. Technol. Biotechnol. 1989, 46, 61–69. [CrossRef]

46. ​​Chattopadhyay, S.; Srivastava, AK; Bhojwani, SS; Bisaria, VS Produkce podofylotoxinu rostlinnými buněčnými kulturami Podophyllum Hexandrum v bioreaktoru. J. Biosci. Bioeng. 2002, 93, 215–220. [CrossRef]

47. Gao, H.; Xu, J.; Liu, X.; Liu, B.; Deng, X. Vliv světla na produkci karotenoidů a expresi genů karotenogeneze v citrusovém kalusu čtyř genotypů. Acta Physiol. Rostlina. 2011, 33, 2485–2492. [CrossRef]

48. Buranasudja, V.; Rani, D.; Malla, A.; Kobtrakul, K.; Vimolmangkang, S. Pohledy do antioxidačních aktivit a potenciálu proti stárnutí pleti extraktu kalusu z Centella Asiatica (L.). Sci. Rep. 2021, 11, 1–16. [CrossRef]

49. Kikowska, MA; Chmielewska, M.; Włodarczyk, A.; Studzi ´nska-Sroka, E.; ˙Zuchowski, J.; Stochmal, A.; Kotwicka, M.; Thiem, B. Efekt pentacyklických triterpenoidů bohatých na kalusový extrakt z Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach o životaschopnosti, morfologii a proliferaci fibroblastů normální lidské kůže. Molekuly 2018, 23, 3009. [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; Korivi, M.; Lin, F.-Y.; Li, M.-L.; Lin, R.-W.; Wu, J.-J.; Yang, H.-L. Kyselina transskořicová zmírňuje stárnutí způsobené UVA zářením prostřednictvím inhibice aktivace AP-1 a indukce antioxidačních genů zprostředkovaných Nrf{10}}ve fibroblastech lidské kůže. J. Dermatol. Sci. 2018, 90, 123–134. [CrossRef] [PubMed]

51. Adhikari, D.; Panthi, VK; Pangeni, R.; Kim, HJ; Park, JW Příprava, charakterizace a biologické aktivity aktuálních složek proti stárnutí v extraktu z kalusu z Citrus Junos. Molekuly 2017, 22, 2198. [CrossRef] [PubMed]

52. Hong, Y.; Lee, H.; Tran, Q.; Bayarunkh, C.; Boldbaatar, D.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Beneficial Effects of Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos Extract on Aging and Antioxidants in Vitro and in vivo. Toxicol. Res. 2021, 37, 71–83. [CrossRef]

53. Menbari, A.; Bahramnejad, B.; Abuzaripoor, M.; Shahmansouri, E.; Zarei, MA Založení kalusových a buněčných suspenzních kultur ovoce Granny Smith Apple a antityrosinázová aktivita jejich extraktů. Sci. Hortic. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. Machała, P.; Liudvytska, O.; Kicel, A.; Dziedzic, A.; Olszewska, MA; ˙Zbikowska, HM Valorizace fotoprotektivního potenciálu fytochemicky standardizovaného extraktu z listů olivovníku (Olea Europaea L.) ve fibroblastech lidské kůže ozářených UVA. Molekuly 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. Lee, H.; Hong, Y.; Tran, Q.; Cho, H.; Kim, M.; Kim, C.; Kwon, SH; Park, S.; Park, J.; Park, J. Nová role ginsenosidu RG3 v antiagingu prostřednictvím funkce mitochondrií v ultrafialově ozářených lidských dermálních fibroblastech. J. Ginseng Res. 2019, 43, 431–441. [CrossRef]

56. Lee, H.; Hong, Y.; Kwon, SH; Park, J.; Park, J. Anti-Aging Effects of Piper Cambodianum P. Fourn. Extrakt na normálních lidských dermálních fibroblastových buňkách a model hojení ran u myší. Clin. Interv. Stárnutí 2016, 11, 1017.

57. Rani, D.; Buranasudja, V.; Kobtrakul, K.; De-Eknamkul, W.; Vimolmangkang, S. Vyvolání Pueraria Candollei Var. Suspenzní buňky Mirifica slibují antioxidační potenciál, což znamená aktivitu proti stárnutí. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2021, 145, 29–41. [CrossRef]

58. Kim, HJ; Park, JW Anti-Aging Activities of Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Kalus Extract. Trop. J. Pharm. Res. 2017, 16, 1579–1588. [CrossRef]

59. Kim, H.-R.; Kim, S.; Jie, EY; Kim, SJ; Ahn, WS; Jeong, S.-I.; Yu, K.-Y.; Kim, SW; Kim, S.-Y. Účinky extraktu Tiarella Polyphylla D. Don Callus na fotostárnutí v buňkách Hs68 fibroblastů lidské předkožky. Nat. Prod. Commun. 2021, 16, 1934578X211016970. [CrossRef]

60. Chalageri, G.; Dhananjaya, S.; Raghavendra, P.; Kumar, LS; Babu, U.; Varma, SR Nahrazení rostlinných vegetativních částí výtažky z kalusových buněk: případová studie s Woodfordia Fruticosa Kurz. – účinná složka ve formulacích péče o pleť. S. Afr. J. Bot. 2019, 123, 351–360. [CrossRef]

61. Zhao, P.; Alam, MB; Lee, S.-H. Ochrana proti fotostárnutí vyvolanému UVB zářením pomocí vodního extraktu z čaje Fuzhuan-Brick prostřednictvím MAPK/Nrf2- zprostředkovaná down-regulace MMP-1. Živiny 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; Tsai, Y.-C.; Huang, P.-J.; Ou, T.-T.; Korivi, M.; Hsu, L.-S.; Chang, S.-H.; Wu, C.-R.; Yang, H.-L. Dermatoprotektivní účinky lucidonu z Lindera Erythrocarpa prostřednictvím indukce antioxidačních genů zprostředkovaných Nrf{10} v keratinocytech lidské pokožky ozářených UVA. J. Funct. Potraviny 2015, 12, 303–318. [CrossRef]

63. Cho, WK; Kim, H.-I.; Kim, S.-Y.; Seo, HH; Song, J.; Kim, J.; Shin, DS; Jo, Y.; Choi, H.; Lee, JH Účinky proti stárnutí extraktu z kalusové kultury Leontopodium Alpinum (protěže) prostřednictvím profilování transkriptomu. Geny 2020, 11, 230. [CrossRef]

64. Vichit, W.; Saewan, N. Antioxidační a anti-aging aktivity kalusové kultury ze tří odrůd rýže. Kosmetika 2022, 9, 79. [CrossRef]

65. Kunchana, K.; Jarisarapurin, W.; Chularojmontri, L.; Wattanapitayakul, SK Potenciální použití extraktu z ovoce Amla (Phyllanthus Emblica L.) k ochraně kožních keratinocytů před zánětem a apoptózou po ozáření UVB. Antioxidanty 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. Farràs, A.; Mitjans, M.; Maggi, F.; Caprioli, G.; Vinardell, MP; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) jako zdroj bioaktivních sloučenin: Polyfenolický profil, cytotoxicita a cytoprotektivní vlastnosti v různých buněčných liniích. Přední. Pharmacol. 2021, 12, 727528. [CrossRef]

67. Park, DE; Adhikari, D.; Pangeni, R.; Panthi, VK; Kim, HJ; Park, JW Příprava a charakterizace extraktu kalusu z Pyrus Pyrifolia a zkoumání jeho účinků na regeneraci kůže. Kosmetika 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. Soběh, M.; Petruk, G.; Osman, S.; El Raey, MA; Imbimbo, P.; Monti, DM; Wink, M. Isolation of Myricitrin and 3,5-Di-O-Methyl Gossypetin from Syzygium Samarangense and Evaluation of their Involvement in Protection Keratinocytes against oxidative stress through Activation of Nrf-2 Pathway. Molekuly 2019, 24, 1839. [CrossRef]

69. Zahid, NA; Jaafar, HZ; Hakiman, M. Mikropropagace zázvoru (Zingiber Officinale Roscoe)'Bentong'a hodnocení jeho sekundárních metabolitů a antioxidačních aktivit ve srovnání s konvenčně množenou rostlinou. Rostliny 2021, 10, 630. [CrossRef] [PubMed]

70. Jin, S.; Hyun, TK Ektopická exprese produkce anthokyanového pigmentu 1 (PAP1) zlepšuje antioxidační a antimelanogenní vlastnosti chlupatých kořenů ženšenu (Panax Ginseng CA Meyer). Antioxidanty 2020, 9, 922. [CrossRef] [PubMed]

71. Sena, LM; Zappelli, C.; Apone, F.; Barbulová, A.; Tito, A.; Leone, A.; Oliviero, T.; Ferracane, R.; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Výtažky z chlupatého kořene Rapa podporují depigmentaci pokožky modulací produkce a distribuce melaninu. J. Cosmet. Dermatol. 2018, 17, 246–257. [CrossRef] [PubMed]

72. Petruk, G.; Illiano, A.; Del Giudice, R.; Raiola, A.; Amoresano, A.; Rigano, MM; Piccoli, R.; Monti, DM Malvidin a deriváty kyanidinu z ovoce Açai (Euterpe Oleracea Mart.) působí proti oxidačnímu stresu vyvolanému UV-A v imortalizovaných fibroblastech. J. Photochem. Photobiol. B 2017, 172, 42–51. [CrossRef] [PubMed]

73. Apone, F.; Tito, A.; Carola, A.; Arciello, S.; Tortora, A.; Filippini, L.; Monoli, I.; Cucchiara, M.; Gibertoni, S.; Chrispeels, MJ Směs peptidů a cukrů získaných ze stěn rostlinných buněk zvyšuje obranné reakce rostlin na stres a zmírňuje molekulární změny v kultivovaných kožních buňkách související se stárnutím. J. Biotechnol. 2010, 145, 367–376. [CrossRef]

74. Sun, Z.; Park, SY; Hwang, E.; Zhang, M.; Seo, SA; Lin, P.; Yi, T. Thymus Vulgaris zmírňuje poškození kůže způsobené UVB zářením prostřednictvím inhibice MAPK/AP-1 a aktivace antioxidačního systému Nrf2-ARE. J. Cell. Mol. Med. 2017, 21, 336–348. [CrossRef]

75. Tito, A.; Carola, A.; Bimonte, M.; Barbulová, A.; Arciello, S.; de Laurentiis, F.; Monoli, I.; Hill, J.; Gibertoni, S.; Colucci, G. Extrakt kmenových buněk rajčat, obsahující antioxidační sloučeniny a chelatační faktory kovů, chrání kožní buňky před poškozením způsobeným těžkými kovy. Int. J. Cosmet. Sci. 2011, 33, 543–552. [CrossRef]

76. Jiao, J.; Gai, Q.-Y.; Wang, X.; Qin, Q.-P.; Wang, Z.-Y.; Liu, J.; Fu, Y.-J. Chitosan elicitace Isatis Tinctoria L. chlupatých kořenových kultur pro zvýšení produktivity flavonoidů a genové exprese a související antioxidační aktivity. Ind. Crops Prod. 2018, 124, 28–35. [CrossRef]

77. Isah, T.; Umar, S.; Mujib, A.; Sharma, MP; Rajasekharan, P.; Zafar, N.; Frukh, A. Sekundární metabolismus léčiv v rostlinných kulturách in vitro: Strategie, přístupy a omezení k dosažení vyššího výnosu. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2018, 132, 239–265. [CrossRef]

78. Lee, K.-J.; Park, Y.; Kim, J.-Y.; Jeong, T.-K.; Yun, K.-S.; Paek, K.-Y.; Park, S.-Y. Produkce biomasy a bioaktivních sloučenin z adventivních kořenových kultur Polygonum multiflorum pomocí vzduchových bioreaktorů. J. Plant Biotechnol. 2015, 42, 34–42. [CrossRef]

79. Sharma, P.; Padh, H.; Shrivastava, N. Chlupaté kořenové kultury: Vhodný biologický systém pro studium sekundárních metabolických drah v rostlinách. Ing. Life Sci. 2013, 13, 62–75. [CrossRef]

80. Grzegorczyk, I.; Królička, A.; Wysoki´nska, H. Založení Salvia Officinalis L. Chlupaté kořenové kultury pro produkci kyseliny rozmarinové. Z. Für Naturforschung C 2006, 61, 351–356. [CrossRef]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; Frydrych, B.; Królička, A.; Wysoki´nska, H. Chlupaté kořeny Dracocephalum Moldavica: Obsah kyseliny rozmarinové a antioxidační potenciál. Acta Physiol. Rostlina. 2013, 35, 2095–2103. [CrossRef]

82. Srivastava, S.; Conlan, XA; Adholeya, A.; Cahill, DM Elitní chlupaté kořeny Ocimum Basilicum jako nový zdroj kyseliny rozmarinové a antioxidantů. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2016, 126, 19–32. [CrossRef]

83. Šekarchi, M.; Hajimehdipoor, H.; Saeidnia, S.; Gohari, AR; Hamedani, MP Srovnávací studie obsahu kyseliny rozmarinové v některých rostlinách čeledi Labiatae. Pharmacogn. Mag. 2012, 8, 37.

84. Apone, F.; Tito, A.; Arciello, S.; Carotenuto, G.; Colucci, MG Rostlinné tkáňové kultury jako zdroje ingrediencí pro aplikace péče o pleť. Annu. Plant Rev. Online 2018, 3, 135–150.

85. Ono, NN; Tian, ​​L. Mnohonásobnost chlupatých kořenových kultur: Plodné možnosti. Plant Sci. 2011, 180, 439–446. [CrossRef] [PubMed]

86. Jin, S.; Bang, S.; Ahn, M.-A.; Lee, K.; Kim, K.; Hyun, TK Nadprodukce anthokyanů v chlupatých kořenech ženšenu zvyšuje jejich antioxidační, antimikrobiální a antielastázové aktivity. J. Plant Biotechnol. 2021, 48, 100–105. [CrossRef]

87. Bouzroud, S.; El Maaiden, E.; Soběh, M.; Devkota, KP; Boukcim, H.; Kouišní, L.; El Kharrassi, Y. Mikropropagace Opuntia a dalších druhů kaktusů prostřednictvím proliferace axilárních výhonků: Komplexní přehled. Přední. Plant Sci. 2022, 13, 926653. [CrossRef] [PubMed]

88. Gonçalves, S.; Romano, A. In vitro kultura levandule (Lavandula spp.) a produkce sekundárních metabolitů. Biotechnol. Adv. 2013, 31, 166–174. [CrossRef]

89. Goyali, J.; Igamberdiev, A.; Debnath, S. Mikropropagace ovlivňuje nejen morfologii plodů borůvky nízké (Vaccinium Angustifolium Ait.), ale také její léčivé vlastnosti. In Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Canada, 17.–19. června 2013; s. 137–142.

90. Dakah, A.; Zaid, S.; Suleiman, M.; Abbas, S.; Wink, M. In vitro množení léčivé rostliny Ziziphora Tenuior L. a hodnocení její antioxidační aktivity. Saudi J. Biol. Sci. 2014, 21, 317–323. [CrossRef] [PubMed]

91. Sooriamuthu, S.; Varghese, RJ; Bayyapureddy, A.; John, SST; Narayanan, R. Světlem indukovaná produkce antidepresivních sloučenin v etiolovaných výhonkových kulturách Hypericum Hookerianum Wight & Arn. (Hypericaceae). Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2013, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; Matkowski, A.; Wysoki´nska, H. Antioxidační aktivita extraktů z in vitro kultur Salvia Officinalis L. Food Chem. 2007, 104, 536–541. [CrossRef]

93. Al Khateeb, W.; Hussein, E.; Qouta, L.; Alu'datt, M.; Al-Shara, B.; Abu-Zaiton, A. In vitro propagace a charakterizace obsahu fenolů spolu s antioxidačními a antimikrobiálními aktivitami Cichorium Pumilum Jacq. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2012, 110, 103–110. [CrossRef]

94. Rehman, R.; Chaudhary, M.; Khawar, K.; Lu, G.; Mannan, A.; Zia, M. In vitro množení Caralluma tuberculata a hodnocení antioxidačního potenciálu. Biologia (Bratislava) 2014, 69, 341–349. [CrossRef]

95. Abdulhafiz, F.; Mohammed, A.; Kayat, F.; Zakaria, S.; Hamzah, Z.; Reddy Pamuru, R.; Gundala, PB; Reduan, MFH Mikropropagace Alocasia Longiloba Miq a srovnávací antioxidační vlastnosti ethanolických extraktů z polních rostlin, in vitro množených a in vitro odvozených kalusů. Rostliny 2020, 9, 816. [CrossRef]

96. Ikeuchi, M.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Rostlinný kalus: Mechanismy indukce a represe. Rostlinná buňka 2013, 25, 3159–3173. [CrossRef]

97. Fehér, A. Kalus, Dediferenciace, totipotence, somatická embryogeneze: Co tyto pojmy znamenají v éře molekulární biologie rostlin? Přední. Plant Sci. 2019, 10, 536. [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. Technologie rostlinných kultur: Slibné alternativy k produkci vysoce hodnotných sekundárních metabolitů. Arab. J. Chem. 2022, 15, 104161. [CrossRef]

99. Dal Toso, R.; Melandri, F. Technologie rostlinné buněčné kultury: zdroj nových přísad. PÉČE 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. Cell Culture: An Innovative Approach for Production of Plant Actives; Russell Publishing Ltd.: Brasted, Spojené království, 2018.

101. Gao, W.-Y.; Wang, J.; Li, J.; Wang, Q. Produkce biomasy a bioaktivních sloučenin z buněčných suspenzních kultur Panax Quinquefolium L. a Glycyrrhiza Uralensis Fisch. In Výroba biomasy a bioaktivních sloučenin pomocí technologie bioreaktorů; Springer: Berlín/Heidelberg, Německo, 2014; s. 143–164.

102. Bagheri, F.; Tahvilian, R.; Karimi, N.; Chalabi, M.; Azami, M. Shikonin Production by Callus Culture of Onosma Bulbotrichom as Active Pharmaceutical Ingredient. Írán. J. Pharm. Res. IJPR 2018, 17, 495. [PubMed]

103. Guo, S.; Man, S.; Gao, W.; Liu, H.; Zhang, L.; Xiao, P. Produkce flavonoidů a polysacharidů přidáním elicitoru v různých procesech buněčné kultivace Glycyrrhiza Uralensis Fisch. Acta Physiol. Rostlina. 2013, 35, 679–686. [CrossRef]

104. Wang, QJ; Zheng, LP; Sima, YH; Yuan, HY; Wang, JW Methyljasmonát stimuluje 20-produkci hydroxyekdysonu v buněčných suspenzních kulturách 'Achyranthes Bidentata'. Plant Omics 2013, 6, 116–120.

105. Bimonte, M.; Tito, A.; Carola, A.; Barbulová, A.; Apone, F.; Colucci, G.; Cucchiara, M.; Hill, J. Dolichos Extrakt z buněčné kultury pro ochranu proti poškození UV zářením. Kosmetická toaleta 2014, 129, 46–56.

106. Imparato, G.; Casale, C.; Scamardella, S.; Urciuolo, F.; Bimonte, M.; Apone, F.; Colucci, G.; Netti, P. Novel Engineered Dermis for in Vitro Photodamage Research. J. Tissue Eng. Regen. Med. 2017, 11, 2276–2285. [CrossRef] [PubMed]

107. Vertuani, S.; Beghelli, E.; Scalambra, E.; Malisardi, G.; Copetti, S.; Toso, RD; Baldisserotto, A.; Manfredini, S. Studie aktivity a stability verbascosidu, nového antioxidantu, v dermokosmetických a farmaceutických topických přípravcích. Molekuly 2011, 16, 7068–7080. [CrossRef]

108. Bimonte, M.; Carola, A.; Tito, A.; Barbulová, A.; Carucci, F.; Apone, F. Coffea Bengalensis pro aplikace proti vráskám a tónování pleti. Kosmetika. Toaleta. 2011, 126, 644–650.

109. Yue, W.; Ming, Q.; Lin, B.; Rahman, K.; Zheng, C.-J.; Han, T.; Qin, L. Suspenzní kultury léčivých rostlin: Farmaceutické aplikace a strategie vysokého výtěžku pro požadované sekundární metabolity. Crit. Rev. Biotechnol. 2016, 36, 215–232. [CrossRef]

110. Baenas, N.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: Nástroj pro obohacení bioaktivního složení potravin. Molekuly 2014, 19, 13541–13563. [CrossRef]

111. Vasconsuelo, A.; Boland, R. Molekulární aspekty raných fází elicitace sekundárních metabolitů v rostlinách. Plant Sci. 2007, 172, 861–875. [CrossRef]

112. Halder, M.; Sarkar, S.; Jha, S. Elicitation: Biotechnologický nástroj pro zvýšenou produkci sekundárních metabolitů ve vlasatých kořenových kulturách. Ing. Life Sci. 2019, 19, 880–895. [CrossRef] [PubMed]

113. Usman, H.; Ullah, MA; Jan, H.; Siddiquah, A.; Drouet, S.; Anjum, S.; Giglioli-Guviarc'h, N.; Hano, C.; Abbasi, BH Interaktivní účinky širokospektrých monochromatických světel na fytochemickou produkci, antioxidační a biologické aktivity kultur kalusu Solanum Xanthocarpum. Molekuly 2020, 25, 2201. [CrossRef] [PubMed]

114. D'Alessandro, R.; Docimo, T.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; De Palma, M.; Cappetta, E.; Tucci, M. Vyvolání abiotických stresů zvyšuje produktivitu Cardoon Calli jako biologických továren na výrobu specializovaných metabolitů. Antioxidanty 2022, 11, 1041. [CrossRef] [PubMed]

115. Chen, R.; Li, Q.; Tan, H.; Chen, J.; Xiao, Y.; Ma, R.; Gao, S.; Zerbe, P.; Chen, W.; Zhang, L. Síť mezi genem a metabolismem pro biosyntézu lignanů v kulturách chlupatých kořenů Isatis Indigotica vyvolaných MeJA. Přední. Plant Sci. 2015, 6, 952. [CrossRef]

116. Wen, T.; Hao, Y.-J.; An, X.-L.; Sun, H.-D.; Li, Y.-R.; Chen, X.; Piao, X.-C.; Lian, M.-L. Zlepšení akumulace bioaktivních sloučenin v buněčných kulturách Orostachys Cartilaginous A. Bor. prostřednictvím elicitace kyselinou salicylovou a účinku buněčného extraktu na bioaktivní aktivitu. Ind. Crops Prod. 2019, 139, 111570. [CrossRef]

117. Al-Khayri, JM; Naik, PM Produkce biomasy a farmaceutických fenolických sloučenin indukovaná elicitorem v buněčné suspenzní kultuře datlovce (Phoenix Dactylifera L.). Molekuly 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. Durán, MDL; Zabala, MEA; Londoño, GAC Optimalizace produkce flavonoidů v rostlinné buněčné kultuře Thevetia Peruviana vyvolané methyljasmonátem a kyselinou salicylovou. Braz. Oblouk. Biol. Technol. 2021, 64, e21210022. [CrossRef]

119. Wongwicha, W.; Tanaka, H.; Shoyama, Y.; Putalun, W. Elicitace methyljasmonátu zvyšuje produkci glycyrrhizinu v kulturách chlupatých kořenů Glycyrrhiza Inflata. Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [CrossRef]

120. Shoja, AA; Çirak, C.; Ganjeali, A.; Cheniany, M. Stimulace akumulace fenolických sloučenin a antioxidační aktivity v in vitro kultuře Salvia Tebesana Bunge v reakci na elicitory nano-TiO2 a methyljasmonát. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2022, 149, 423–440. [CrossRef]

121. Pilaisangsuree, V.; Somboon, T.; Tonglairum, P.; Keawracha, P.; Wongsa, T.; Kongbangkerd, A.; Limmongkon, A. Zvýšení stilbenových sloučenin a protizánětlivá aktivita methyljasmonátu a cyklodextrinu vyvolané arašídové chlupaté kořenové kultury. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2018, 132, 165–179. [CrossRef]

122. Ayoola-Oresanya, IO; Sonibare, MA; Gueye, B.; Abberton, MT; Morlock, GE Elicitace antioxidačních metabolitů u druhů Musa in vitro Shoot Culture s použitím sacharózy, teploty a kyseliny jasmonové. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2021, 146, 225–236. [CrossRef]

123. Mosavat, N.; Golkar, P.; Yousefard, M.; Javed, R. Modulace růstu kalusu a sekundárních metabolitů u různých druhů brzlíku a Zataria Multiflora Micropropagated under ZnO Nanoparticles Stress. Biotechnol. Appl. Biochem. 2019, 66, 316–322. [CrossRef] [PubMed]

124. Ali, A.; Mohammad, S.; Khan, MA; Raja, NI; Arif, M.; Kamil, A.; Mashwani, Z.-R. Nanočástice stříbra získané in vitro kalusovými kulturami pro akumulaci biomasy a sekundárních metabolitů v Caralluma Tuberculata. Artif. Buňky Nanomedicína Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [CrossRef] [PubMed]

125. Chung, I.-M.; Rajakumar, G.; Thiruvengadam, M. Vliv nanočástic stříbra na produkci fenolických sloučenin a biologické aktivity v chlupatých kořenových kulturách Cucumis anguria. Acta Biol. Visel. 2018, 69, 97–109. [CrossRef]

126. Javed, R.; Mohamed, A.; Yücesan, B.; Gürel, E.; Kausar, R.; Zia, M. Nanočástice CuO významně ovlivňují kulturu Vitro, glykosidy steviolu a antioxidační aktivity Stevia rebaudiana Bertoni. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2017, 131, 611–620. [CrossRef]

127. Zigoneanu, IG; Astete, CE; Sabliov, CM Nanočástice se zachyceným tokoferolem: Syntéza, charakterizace a řízené uvolňování. Nanotechnology 2008, 19, 105606. [CrossRef] [PubMed]

128. Królicka, A.; Lojkowska, E.; Staniszewska, I.; Malinski, E.; Szafranek, J. Identifikace sekundárních metabolitů v kultuře in vitro Ammi Majus ošetřené elicitory. In Proceedings of the IV International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Tampere, Finsko, 2-7 July 2000; s. 255–258.

129. Fazal, H.; Abbasi, BH; Ahmad, N.; Ali, M.; Shujait Ali, S.; Khan, A.; Wei, D.-Q. Udržitelná produkce biomasy a průmyslově významných sekundárních metabolitů v buněčných kulturách samoléčení (Prunella vulgaris L.) vyvolaných nanočásticemi stříbra a zlata. Artif. Buňky Nanomedicína Biotechnol. 2019, 47, 2553–2561. [CrossRef] [PubMed]

130. Yan, Q.; Hu, Z.; Tan, RX; Wu, J. Efektivní produkce a obnova diterpenoidních tanshinonů v kulturách chlupatých kořenů Salvia Miltiorrhiza s adsorpcí in situ, elicitací a semikontinuálním provozem. J. Biotechnol. 2005, 119, 416–424. [CrossRef]

131. Shakeran, Z.; Keyhanfar, M.; Ghanadian, M. Biotická elicitace pro produkci skopolaminu chlupatými kořenovými kulturami Datura Metel. Mol. Biol. Res. Commun. 2017, 6, 169.

132. Lu, M.; Wong, H.; Teng, W. Účinky elicitace na produkci saponinu v buněčné kultuře Panax Ginseng. Plant Cell Rep. 2001, 20, 674–677. [CrossRef]

133. Shams-Ardakani, M.; Hemmati, S.; Mohagheghzadeh, A. Vliv elicitorů na zvýšení biosyntézy podofylotoxinu v suspenzních kulturách linumového alba. DARU J. Pharm. Sci. 2005, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; Cusidó, RM; Bonfill, M.; Mallol, A.; Moyano, E.; Morales, C.; Piñol, MT Vyvolání různých fenotypů transformovaných kořenů Panax Ginseng pro zlepšenou produkci ginsenosidu. Plant Physiol. Biochem. 2003, 41, 1019–1025. [CrossRef]

135. Murthy, HN; Lee, E.-J.; Paek, K.-Y. Produkce sekundárních metabolitů z buněčných a orgánových kultur: Strategie a přístupy pro zlepšení biomasy a akumulaci metabolitů. Kult orgánů rostlinné buněčné tkáně. PCTOC 2014, 118, 1–16. [CrossRef]

136. Javid, A.; Gampe, N.; Gelana, F.; György, Z. Zvýšení akumulace rosavinů v Rhodiola Rosea L. Rostliny pěstované in vitro krmením prekurzorem. Agronomie 2021, 11, 2531. [CrossRef]

137. Ahmadian Chashmi, N.; Sharifi, M.; Behmanesh, M. Lignan Enhancement in Hairy Root Cultures of Linum Album using Coniferaldehyde and Methylendioxycinnamic Acid. Přípravka. Biochem. Biotechnol. 2016, 46, 454–460. [CrossRef]

138. Karppinen, K.; Hokkanen, J.; Tolonen, A.; Mattila, S.; Hohtola, A. Biosyntéza hyperforinu a adhyperforinu z prekurzorů aminokyselin v výhonkových kulturách Hypericum Perforatum. Fytochemie 2007, 68, 1038–1045. [CrossRef]

139. Jeong, C.-S.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Zlepšená produkce ginsenosidů v suspenzních kulturách ženšenu pomocí strategie středního doplňování. J. Biosci. Bioeng. 2008, 105, 288–291. [CrossRef]

140. Wu, C.-H.; Murthy, HN; Hahn, E.-J.; Paek, K.-Y. Zlepšená produkce derivátů kyseliny kávové v suspenzních kulturách Echinacea Purpurea pomocí strategie středního doplňování. Oblouk. Pharm. Res. 2007, 30, 945–949. [CrossRef]

141. Wang, C.; Wu, J.; Mei, X. Zvýšená produkce a uvolňování taxolu v suspenzních kulturách buněk Taxus Chinensis s vybranými organickými rozpouštědly a sacharózou. Biotechnol. Prog. 2001, 17, 89–94. [CrossRef]

142. Yadav, D.; Tanveer, A.; Malviya, N.; Yadav, S. Přehled a principy bioinženýrství: Ovladače technologií Omics. In Omics Technologies and Bio-Engineering; Elsevier: Amsterdam, Nizozemsko, 2018; s. 3–23.

143. Gonçalves, S.; Romano, A. Produkce rostlinných sekundárních metabolitů pomocí biotechnologických nástrojů. Druhý. Metab.-Sources Appl. 2018, 5, 81–99.

144. Vásquez, SM; Abascal, GGW; Leal, CE; Cardineau, GA; Lara, SG Aplikace metabolického inženýrství ke zvýšení obsahu alkaloidů v léčivých rostlinách. Metab. Ing. Commun. 2022, 14, e00194. [CrossRef] [PubMed]

145. Verpoorte, R.; Contin, A.; Memelink, J. Biotechnologie pro produkci rostlinných sekundárních metabolitů. Phytochem. Rev. 2002, 1, 13–25. [CrossRef]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. Regulace metabolismu tropanových alkaloidů v rostlinách a kulturách rostlinných buněk. In Metabolické inženýrství rostlinného sekundárního metabolismu; Springer: Berlín/Heidelberg, Německo, 2000; s. 253–281.

147. Zhong, J.-J. Kultura rostlinných buněk pro produkci paclitaxelu a dalších taxanů. J. Biosci. Bioeng. 2002, 94, 591–599. [CrossRef] [PubMed]

148. Singh, B.; Sharma, RA Sekundární metabolity léčivých rostlin, sada 4 svazků: ​​Etnofarmakologické vlastnosti, biologická aktivita a produkční strategie; John Wiley & Sons: Hoboken, NJ, USA, 2020; ISBN 3-527-34732-1.

149. Galih, PR; Esynti, RR Vliv imobilizace na buněčný růst a obsah alkaloidů v buněčné agregované kultuře Eurycoma Longifolia Jack. Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. Zhang, P.; Zhou, W.; Wang, P.; Wang, L.; Tang, M. Zvýšení produkce chitosanázy pomocí buněčné imobilizace Gongronella Sp. JG. Braz. J. Microbiol. 2013, 44, 189–195. [CrossRef] [PubMed]

151. Premjet, D.; Tachibana, S. Produkce podofylotoxinu imobilizovanými buněčnými kulturami Juniperus Chinensis. Pak. J Biol Sci 2004, 7, 1130-1134.

152. Vanisree, M.; Lee, C.-Y.; Lo, S.-F.; Nalawade, SM; Lin, CY; Tsay, H.-S. Studie o produkci některých důležitých sekundárních metabolitů z léčivých rostlin rostlinnými tkáňovými kulturami. Bot Bull Acad Sin 2004, 45, 1–22.

153. Hussain, MS; Fareed, S.; Ansari, S.; Rahman, MA; Ahmad, IZ; Saeed, M. Současné přístupy k produkci sekundárních rostlinných metabolitů. J. Pharm. Bioallied Sci. 2012, 4, 10. [CrossRef]

154. Malík, S.; Hossein Mirjalili, M.; Fett-Neto, AG; Mazzafera, P.; Bonfill, M. Život mezi dvěma světy: Dvoufázové kultivační systémy pro produkci rostlinných sekundárních metabolitů. Crit. Rev. Biotechnol. 2013, 33, 1–22. [CrossRef]

155. Lee-Parsons, CW; Shuler, ML Vliv načasování přidání ajmalicinu a přidání pryskyřice na produkci indolových alkaloidů z buněčných kultur Catharanthus Roseus. Biotechnol. Bioeng. 2002, 79, 408–415. [CrossRef]

156. Komaraiah, P.; Ramakrishna, S.; Reddanna, P.; Kishor, PK Zvýšená produkce plumbaginu v imobilizovaných buňkách Plumbago Rosea elicitací a in situ adsorpcí. J. Biotechnol. 2003, 101, 181–187. [CrossRef]

157. Klvana, M.; Legros, R.; Jolicoeur, M. In situ, Strategie extrakce ovlivňuje toky produkce benzofenanthridinových alkaloidů v suspenzních kulturách Eschscholtzia Californica. Biotechnol. Bioeng. 2005, 89, 280–289. [CrossRef] [PubMed]

158. Gao, M.-B.; Zhang, W.; Ruan, C. Významně zlepšená produkce taxuyunnaninu C v buněčných suspenzních kulturách Taxus Chinensis procesní intenzifikací opakované elicitace, sacharózou a adsorpcí in situ. World J. Microbiol. Biotechnol. 2011, 27, 2271–2279. [CrossRef]

159. Chiang, L.; Abdullah, MA Zvýšená produkce antrachinonů z kultur suspenzních buněk Morinda Elliptica ošetřených adsorbentem ve strategii produkčního média. Process Biochem. 2007, 42, 757–763. [CrossRef]

Zřeknutí se odpovědnosti / Poznámka vydavatele:Prohlášení, názory a údaje obsažené ve všech publikacích jsou výhradně výroky jednotlivých autorů a přispěvatelů, nikoli MDPI a/nebo editorů. MDPI a/nebo redaktoři se zříkají odpovědnosti za jakékoli zranění osob nebo majetku vyplývající z jakýchkoli nápadů, metod, pokynů nebo produktů uvedených v obsahu.

【Další informace:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:{0}}】